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母乳源表皮葡萄球菌比较基因组学  PDF

  • 赵乾 1,2,3,4
  • 李伟程 1,2,3,4
  • 李瑜 1,2,3,4
  • 孙佳琦 1,2,3,4
  • 钟智 1,2,3,4
  • 张和平 1,2,3,4
1. 乳酸菌与发酵乳制品省部共建协同创新中心,内蒙古 呼和浩特; 2. 内蒙古农业大学,乳品生物技术与工程教育部重点实验室,内蒙古 呼和浩特; 3. 农业农村部奶制品加工重点实验室,内蒙古 呼和浩特; 4. 内蒙古自治区乳品生物技术与工程重点实验室,内蒙古 呼和浩特

最近更新:2025-04-30

DOI: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240754

CSTR: 32112.14.j.AMS.20240754

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摘要

目的

表皮葡萄球菌(Staphylococcus epidermidis)是一种凝固酶阴性、革兰氏染色阳性的球菌,广泛存在于皮肤、母乳和血液等环境中。母乳中的细菌对婴幼儿肠道初始菌群的建立及免疫力的提高具有至关重要的作用,本研究通过比较基因组学分析,以期了解母乳源表皮葡萄球菌的遗传多样性和功能基因特征。

方法

使用Illumina NovaSeq高通量测序平台,对前期分离自健康母乳中的110株表皮葡萄球菌进行基因组测序,并结合NCBI已公开的263株皮肤源、血液源和母乳源表皮葡萄球菌的基因组序列进行比较基因组学分析。

结果

373株表皮葡萄球菌的基因组大小为(2.50±0.33) Mb,G+C含量为(32.0±0.1)%,编码序列(coding sequence, CDs)数量为(2 331±368)个。不同分离源的菌株在基因组大小和CDs数量上均存在显著差异(P<0.05),其中血液源菌株的基因组较大且CDs数量较多。系统发育树结果显示,表皮葡萄球菌在系统发育树上呈现一定的分离源聚类趋势,体内分离源(母乳源和血液源)菌株的亲缘关系更近。不同分离源的菌株在携带毒力因子和耐药基因的数量上也存在显著差异(P<0.05),血液源菌株携带的毒力基因和耐药基因种类最多,而母乳源菌株携带毒力基因和耐药基因种类最少。

结论

表皮葡萄球菌为了适应不同生境发生了适应性进化。相较于皮肤源和血液源菌株,母乳源菌株在生物膜合成相关基因、耐药基因及毒力因子的携带率上较低。本研究为表皮葡萄球菌的适应性进化提供了新的见解,并为后续母乳源分离株遗传背景的相关研究提供了一定的理论依据。

表皮葡萄球菌(Staphylococcus epidermidis)广泛存在于皮肤、环境及母乳[

1-2]。长期以来,表皮葡萄球菌被认为是一种人类共生微生[3],能够通过刺激黏膜相关T细胞来启动皮肤免疫应[4]。同时,表皮葡萄球菌在人体皮肤上会产生一种强大的鞘磷脂酶,增加神经酰胺的含量,从而防止皮肤脱水。鞘磷脂酶基因在表皮葡萄球菌健康皮肤分离株中高度保守,表明表皮葡萄球菌在维持皮肤生理功能完整性和预防过敏或感染方面发挥重要作[5]。然而,表皮葡萄球菌已逐渐成为一种常见的医院病原体,尤其是在免疫功能低下的患者[6]。部分表皮葡萄球菌能够产生生物膜,容易在植入的医疗器械上定植,尤其是血管内器械和脑脊液分流管,进而进入血液引发菌血[7]

母乳最初被认为是无菌的液体。然而,随着对母乳研究的不断深入,现在普遍认为母乳中存在着丰富的微生物资源。2007年,Martín[

8]证明母乳中存在多种细菌。Togo[9]对目前已知人类乳汁中的微生物进行了系统评价,发现母乳中已鉴定出超过820种细菌和古菌,主要包括变形菌门和厚壁菌门。母乳菌群是婴儿早期肠道菌群的稳定来源,其中最常见的细菌属是葡萄球菌属和链球菌属,表皮葡萄球菌被多次分离及鉴[2]。Järvinen[10]发现,母乳中的细菌对婴幼儿肠道中初始菌群的建立以及免疫力的提高起到至关重要的作用,主要通过竞争性排斥病原体和参与免疫系统的成熟来实现。葡萄球菌属,特别是表皮葡萄球菌,可能在这一过程中发挥了重要作用。因此,对母乳源表皮葡萄球菌展开深入研究显得尤为重要。

目前关于母乳源表皮葡萄球菌的研究主要集中在检出和鉴定层面,缺乏对其遗传特性的深入研究。因此,本研究采用Illumina NovaSeq高通量测序平台,对前期从母乳中分离得到的110株表皮葡萄球菌进行基因组测序,并结合NCBI RefSeq数据库 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov)下载的120株皮肤分离源表皮葡萄球菌、101株血液分离源表皮葡萄球菌及42株母乳源表皮葡萄球菌菌株基因组进行比较基因组学分析,以期解析母乳源表皮葡萄球菌的功能特征及进化历程。

1 材料与方法

1.1 实验菌株

本研究依托内蒙古农业大学乳酸菌种质资源库,对前期分离自母乳中的110株表皮葡萄球菌进行基因组测序(经内蒙古农业大学科学研究和学术伦理专业委员会批准,批准号为2018-059),并结合NCBI RefSeq数据库中血液源分离株(101株)、皮肤源分离株(120株)及母乳源分离株(42株)的全基因组序列进行分析。110株母乳源表皮葡萄球菌基因组序列已上传至国家微生物科学数据中心(https://nmdc.cn/resource/genomics/genome/detail/NMDC60198554),菌株相关信息见表1

表1  373株表皮葡萄球菌菌株相关信息
Table 1  Related information on 373 strains of Staphylococcus epidermidis

菌株号

Strain number

GCF/NMDC号

GCF/NMDC number

分离源

Source

菌株号

Strain number

GCF/NMDC号

GCF/NMDC number

分离源

Source

HTM3 NMDC20304984 Milk BJM64-3 NMDC20305025 Milk
HTM4 NMDC20304985 Milk BJM64-4 NMDC20305026 Milk
BJM60-10 NMDC20304986 Milk BJM64-8 NMDC20305027 Milk
BJM60-11 NMDC20304987 Milk BJM64-9 NMDC20305028 Milk
BJM60-12 NMDC20304988 Milk BJM65-10 NMDC20305029 Milk
BJM60-1 NMDC20304989 Milk BJM65-11 NMDC20305030 Milk
BJM60-2 NMDC20304990 Milk BJM65-12 NMDC20305031 Milk
BJM60-3 NMDC20304991 Milk BJM65-1 NMDC20305032 Milk
BJM60-4 NMDC20304992 Milk BJM65-2 NMDC20305033 Milk
BJM60-5 NMDC20304993 Milk BJM65-3 NMDC20305034 Milk
BJM60-6 NMDC20304994 Milk BJM65-4 NMDC20305035 Milk
BJM60-7 NMDC20304995 Milk BJM65-5 NMDC20305036 Milk
BJM60-8 NMDC20304996 Milk BJM65-7 NMDC20305037 Milk
BJM60-9 NMDC20304997 Milk BJM65-9 NMDC20305038 Milk
BJM61-11 NMDC20304998 Milk BJM66-4 NMDC20305039 Milk
BJM61-1 NMDC20305000 Milk BJM67-1 NMDC20305040 Milk
BJM61-2 NMDC20304999 Milk BJM67-2 NMDC20305041 Milk
BJM61-3 NMDC20305001 Milk BJM67-4 NMDC20305042 Milk
BJM61-4 NMDC20304984 Milk BJM67-5 NMDC20305043 Milk
BJM61-5 NMDC20304985 Milk BJM67-6 NMDC20305044 Milk
BJM61-6 NMDC20304986 Milk Cai-13 NMDC20305045 Milk
BJM61-7 NMDC20304987 Milk CLJ-2 NMDC20305046 Milk
BJM61-8 NMDC203049B8 Milk CLJ-3 NMDC20305047 Milk
BJM61-9 NMDC20304989 Milk EFR17-12 NMDC20305048 Milk
BJM62-10 NMDC20304990 Milk EFR17-15 NMDC20305049 Milk
BJM62-11 NMDC20304991 Milk EFR17-18 NMDC20305050 Milk
BJM62-12 NMDC20304992 Milk EFR17-21 NMDC20305051 Milk
BJM62-1 NMDC20304993 Milk EFR17-3 NMDC20305052 Milk
BJM62-2 NMDC20304994 Milk EFR9-11 NMDC20305053 Milk
BJM62-3 NMDC20304995 Milk EFR9-12 NMDC20305054 Milk
BJM62-4 NMDC20304996 Milk EFR9-13 NMDC20305055 Milk
BJM62-6 NMDC20304997 Milk EFR9-4 NMDC20305056 Milk
BJM62-7 NMDC20304998 Milk EFR9-7 NMDC20305057 Milk
BJM62-8 NMDC20305000 Milk EFR9-8 NMDC20305058 Milk
BJM62-9 NMDC20304999 Milk EFR9-9 NMDC20305059 Milk
BJM63-13 NMDC20305001 Milk EYR1-14 NMDC20305060 Milk
BJM63-14 NMDC20304984 Milk EYR1-16 NMDC20305061 Milk
BJM63-1 NMDC20304985 Milk EYR1-2 NMDC20305062 Milk
BJM63-2 NMDC20304986 Milk EYR2-10-1 NMDC20305063 Milk
BJM63-3 NMDC20304987 Milk EYR2-10-2 NMDC20305064 Milk
BJM64-12 NMDC20305002 Milk EYR2-12 NMDC20305065 Milk
EYR2-13-1 NMDC20305066 Milk APC3789 GCF_009897435.1 Milk
EYR2-4-2 NMDC20305067 Milk APC3882 GCF_009897505.1 Milk
EYR4-2 NMDC20305068 Milk APC3780 GCF_009897515.1 Milk
EYR5-15 NMDC20305069 Milk APC3779 GCF_009897605.1 Milk
EYR5-19-2 NMDC20305070 Milk APC3778 GCF_009897625.1 Milk
EYR7-1 NMDC20305071 Milk APC3776 GCF_009897655.1 Milk
EYR7-6 NMDC20305072 Milk APC3777 GCF_009897685.1 Milk
GRM-6-2 NMDC20305073 Milk APC3775 GCF_009897805.1 Milk
HLR12-3-1 NMDC20305074 Milk APC3810 GCF_009897825.1 Milk
HLR2-2 NMDC20305075 Milk APC3764 GCF_009897905.1 Milk
HLR4-1 NMDC20305076 Milk APC3761 GCF_009897925.1 Milk
NXF-3 NMDC20305077 Milk APC3762 GCF_009897935.1 Milk
WLN-1 NMDC20305078 Milk APC3772 GCF_009897945.1 Milk
WLN-2 NMDC20305079 Milk APC3763 GCF_009897975.1 Milk
WLN-4 NMDC203050B0 Milk APC3768 GCF_009898025.1 Milk
WLN-5 NMDC203050B1 Milk APC3769 GCF_009898035.1 Milk
WM-2 NMDC20305082 Milk APC3771 GCF_009898055.1 Milk
WY-6 NMDC20305083 Milk APC3785 GCF_009898115.1 Milk
YJQ-1 NMDC20305084 Milk APC3808 GCF_009896645.1 Milk
YLL-3 NMDC20305085 Milk APC3784 GCF_009896875.1 Milk
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YLR-7 NMDC20305090 Milk APC3804 GCF_009897025.1 Milk
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M0026 GCF_000551165.1 Blood M15_2005 GCF_026157025.1 Blood
M0881 GCF_000362145.1 Blood NGS-ED-1107 GCF_000966705.1 Blood
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NIH04008 GCF_000276085.1 Blood NGS-ED-1110 GCF_000966815.1 Blood
NIH05001 GCF_000276105.1 Blood NGS-ED-1111 GCF_000966755.1 Blood
NIH05003 GCF_000276025.1 Blood NGS-ED-1117 GCF_000966765.1 Blood
NIH05005 GCF_000276125.1 Blood NGS-ED-1118 GCF_000966775.1 Blood
NIH06004 GCF_000276045.1 Blood SH03_17 GCF_002799485.1 Blood
NIH08001 GCF_000276065.1 Blood SH05_16 GCF_002799505.1 Blood
SE48 GCF_008922455.1 Blood SH06_17 GCF_002799565.1 Blood
SE49 GCF_008922445.1 Blood TMDU-128 GCF_024204725.1 Blood
SE53 GCF_008922415.1 Blood VSE37 GCF_003956755.1 Skin
TMDU-137 GCF_024204745.1 Blood VSE39 GCF_003956885.1 Skin
TMDU-190 GCF_024204765.1 Blood VSE4 GCF_003979705.1 Skin
VSE36 GCF_003980285.1 Skin VSE41 GCF_003956805.1 Skin
TMDU-265 GCF_024204785.1 Blood VSE42 GCF_003956875.1 Skin
TMDU-300 GCF_024204805.1 Blood VSE43 GCF_003956905.1 Skin
TMDU-302 GCF_024204825.1 Blood VSE44 GCF_003980205.1 Skin
TMDU-323 GCF_024204845.1 Blood VSE46 GCF_003956995.1 Skin
TMDU-41 GCF_024204705.1 Blood VSE47 GCF_003956955.1 Skin
TSM-18 GCF_024204905.1 Blood VSE49 GCF_003956785.1 Skin
TSM-31 GCF_024204885.1 Blood VSE5 GCF_003979695.1 Skin
TSM-36 GCF_024204925.1 Blood VSE50 GCF_003980275.1 Skin
TSM-47 GCF_024204945.1 Blood VSE52 GCF_003956965.1 Skin
TSM-50 GCF_024204965.1 Blood VSE53 GCF_003956975.1 Skin
TSM-51 GCF_024204985.1 Blood VSE54 GCF_003956855.1 Skin
HESN016B GCF_015070675.1 Blood VSE56 GCF_003980255.1 Skin
HESN103B GCF_015070395.1 Blood VSE57 GCF_003956865.1 Skin
IRL01 GCF_009685135.1 Blood VSE58 GCF_003957035.1 Skin
C03 GCF_015645175.1 Blood TMDU-2014-62 GCF_024204865.1 Blood
VSE3 GCF_003979715.1 Skin JONWP025 GCF_037699105.1 Skin
VSE35 GCF_003956765.1 Skin JONWP069 GCF_037697355.1 Skin
Mt1p16 GCF_001683645.1 Blood

1.2 主要试剂和仪器

LB培养基,OXOID公司;琼脂,厦门市赫凯生物科技有限公司;Tiangen试剂盒,天根生化科技(北京)有限公司。

电热恒温水浴锅,生化培养箱,上海一恒科学仪器有限公司;超微量紫外分光光度计,NanoDrop公司;电子天平,奥豪斯仪器(上海)有限公司;全自动高压干热灭菌器,SANYO公司;高压蒸汽灭菌锅,TOMY公司;漩涡振荡器,Scientific Industries公司;超净工作台,上海智城分析仪器制造有限公司;光学显微镜,奥林巴斯(中国)公司;超纯水系统,昆山总馨机械有限公司。

1.3 菌株活化、基因组DNA的提取及基因组测序

挑取单个菌落于LB液体培养基中,置于37 ℃有氧条件下4 000 r/min培养24 h后传代培养至二代,将二代菌液以2%的接种量接种于35 mL液体培养基中,置于37 ℃有氧条件下扩大培养。培养24 h后,菌液以3 000×g离心5 min,弃上清,使用PBS缓冲溶液洗涤菌液2次,再加入5 mL缓冲液,抽取1 mL菌液以3 000×g离心5 min后,收集细菌菌体。使用十六烷基三甲基溴化铵法(cetyltrimethylammonium bromide, CTAB法)提取表皮葡萄球菌的基因组DNA[

11-12]。使用超微量紫外分光光度计及0.8%的琼脂糖凝胶电泳检测菌株的DNA浓度和纯度。

构建约400 bp的文库,并使用Illumina NovaSeq 6000高通量测序平台进行测序,选取150 bp构建pair-end (PE)测序文库,高质量数据平均覆盖度在500×左右。菌株基因组测序委托北京诺禾致源生物科技股份有限公司完成。

使用Trimmomatic软[

13] (v0.39)对测序得到的原始reads进行过滤,去除低质量数据和接头序列得到纯净数据。

1.4 基因组组装

使用readfq.v5软件对数据进行进一步过滤,保留500×左右的高质量数据。使用SOAPdenove2软[

14] (v2.04)对菌株进行组装,挑选N50和N90较长且scaffold数较少的Kmer。使用SOAP软[14] (v2.21)基于过滤后的高质量reads对组装结果进行单碱基校正。使用GapCloser软件(http://sourceforge.net/proiects/soapdenovo2/files/GapCloser)进行补空缺。使用GTDB数据库(https://gtdb.ecogenomic.org/)[15]对分离株的分类学地位进行确认。使用CheckM软[16] (v1.1.9)评估菌株基因组的完整度(completeness)和污染度(contamination)。

1.5 比较基因组分析

1.5.1 平均核苷酸一致性(average nucleotide identity, ANI)计算

参考Jain[

17]报道的方法计算菌株间的两两ANI值。使用TBtools[18]软件进行可视化处理。

1.5.2 菌群泛-核心基因集构建

利用Prokka软[

19]对菌株基因序列进行预测和注释,再通过Roary软[20]分析菌株基因组,以氨基酸序列相似性大于95%为原则识别基因家族,将菌株共同拥有的基因家族定义为核心基因集,全部基因家族定义为泛基因集。最后利用PanGP软[21]绘制泛-核心基因积累曲线。

1.5.3 系统发育树构建

利用Prokka软[

19]对菌株基因组进行基因预测后,通过Roary软[20]分析得到的核心基因序列,使用TreeBest软[22](http://www.mybiosoftware.com/treebest)中的邻接法(neighbor-joining, NJ)构建系统发育树,Bootstrap值设定为1 000。

1.5.4 功能基因组预测和注释

将Prokka软[

19]注释后得到的faa文件与蛋白质直系同源簇数据库(cluster of orthologous groups of proteins, COG) (vCOG5.0)[23]进行比对,完成功能基因的预测与注释。

1.5.5 耐药基因注释

通过耐药基因数据库(comprehensive antibiotic resistance database, CARD)(http://arpcard.memaster.ca)对373株表皮葡萄球菌进行耐药基因分析。将表皮葡萄球菌蛋白序列与耐药基因数据[

24]进行比对,结果中相似度>85%且E<1×10-5的蛋白序列确定为耐药基因。

1.5.6 毒力基因注释

通过毒力基因数据库(virulence factors of pathogenic bacteria, VFDB) (http://www.mgc.ac.cn/VFs/main.htm)[

25]对373株表皮葡萄球菌进行毒力基因分析。将表皮葡萄球菌蛋白序列与毒力基因数据库进行比对,将相似度>95%、匹配长度>300且E<1×10-5的蛋白序列确定为毒力基因。

1.5.7 统计学分析及数据可视化

使用R软件(v4.2.2)对数据进行统计学分析和数据可视化。利用iTol网[

26]对系统发育树结果进行可视化。数据可视化使用ggplot2包,使用pheatmap包绘制热图。

2 结果与分析

2.1 表皮葡萄球菌基因组基本信息

对373株表皮葡萄球菌基因组质量评估发现,所有菌株的完整性均>95%,污染度<5%,scaffold<300,属于高质量基因组草图,满足后续分析要[

27]。基因组组装结果显示,373株表皮葡萄球菌的平均基因组大小为(2.50±0.33) Mb,G+C含量为(32.0±0.1)%,编码序列(coding sequence, CDs)数量为(2 331±368)个。

对不同分离源菌株的基因组特征进行比较发现(图1),3种分离源菌株在基因组大小和CDs数量方面存在显著差异(P<0.05),均呈现血液源菌株高于皮肤源菌株,高于母乳源菌株的特征。母乳源、血液源和皮肤源菌株的基因组大小分别为(2.50±0.13)、(2.62±0.21)和(2.52±0.23) Mb;对应的CDs数量分别为(2 290±130)、(2 466±233)和(2 323±280)个。母乳源菌株的基因组大小和CDs数量均显著低于其他2种分离源菌株(P<0.05),这可能与母乳环境中营养物质较为丰富有[

28]。相反血液源菌株为了适应血液这种特殊的生境,遗传物质发生变异,可能获得了一些外源基[29]

fig

图1  不同分离源表皮葡萄球菌菌株基因组基本特征比较。A:菌株基因组大小;B:菌株CDs数;C:菌株G+C含量。

Figure 1  Comparison of the basic genomic characteristics of Staphylococcus epidermidis strains from different isolated sources. A: Genome size of the strains; B: Number of CDs of the strains; C: G+C content of the strains.

2.2 ANI分析

为解析表皮葡萄球菌的遗传多样性,本研究对373株表皮葡萄球菌两两之间的ANI值进行了计算。结果如图2所示,373株菌株两两间的ANI值均大于96.50%,模式菌株ATCC 14990T与其他菌株的ANI值范围为(97.40±0.40)%。根据Richter[

30]的标准,物种的ANI界定范围为94%-95%,因此在基因组水平上,所有菌株均属于同一物种。一个有趣的现象是,表皮葡萄球菌ANI值的聚类与其分离源存在一定的相关性。整体而言,体内分离源(母乳和血液)菌株和体外分离源(皮肤)菌株各聚成一类。

fig

图2  不同分离源表皮葡萄球菌ANI值聚类热图

Figure 2  Cluster heat map of ANI values of Staphylococcus epidermidis from different isolated sources.

2.3 菌群泛-核心基因集分析

利用Roary软件构建了373株表皮葡萄球菌的核-泛基因[

31]。结果如图3A所示,373株菌株的泛基因集共包含9 231个基因。其中,核心基因(core gene,所有菌株共有的基因) 1 267个,附属基因(accessory gene,至少在2株菌中存在) 5 521个,特异基因(unique gene,仅在1株菌中存在) 2 263个。通过绘制核-泛基因集曲线发现,核心基因数量随着菌株数量的增加趋于稳定,而泛基因数量则相反,随着菌株数量的增加呈现开放状态。

fig

图3  373株表皮葡萄球菌核-泛基因集、相关基因占比及功能基因注释。A:373株表皮葡萄球菌核-泛基因集;B:3种分离源表皮葡萄球菌核心基因,辅助基因及特有基因占比(1:血液源;2:母乳源;3:皮肤源);C:373株表皮葡萄球菌功能基因注释(C:能量生成和转换;D:细胞周期控制、细胞分裂和染色体分裂;E:氨基酸转运及代谢;F:核苷酸转运及代谢;G:碳水化合物转运及代谢;H:辅酶转运及代谢;I:脂质转运及代谢;J:翻译、核糖体结构和生物合成;K:转录;L:复制、重组和修复;M:细胞壁、细胞膜、细胞被膜生物合成;N:细胞运动;O:翻译后修饰,蛋白质转换和伴侣蛋白;P:无机离子转运及代谢;Q:次级代谢物生物合成、转运及催化;R:主要功能预测;S:未知功能;T:信号转导机制;U:细胞内运输、分泌及囊泡运输;V:防御机制)。

Figure 3  Core-pan genome set of 373 strains of Staphylococcus epidermidis, proportion of related genes, and annotation of functional genes. A: Sclerotio-pangene set of 373 strains of Staphylococcus epidermidis; B: The proportion of core genes, helper genes and endemic genes of Staphylococcus epidermidis from three isolated sources (1: Blood source; 2: Milk source; 3: Skin source); C: Annotation of functional genes of 373 strains of Staphylococcus epidermidis (C: Energy production and conversion; D: Cell cycle control, cell division, chromosome partitioning; E: Amino acid transport and metabolism; F: Nucleotide transport and metabolism; G: Carbohydrate transport and metabolism; H: Coenzyme transport and metabolism; I: Lipid transport and metabolism; J: Translation, ribosomal structure and biogenesis; K:Transcription; L: Replication; recombination and repair; M: Cell wall/membrane/envelope biogenesis; N: Cell motility; O: Posttranslational modification, protein turnover, chaperones; P: Inorganic ion transport and metabolism; Q: Secondary metabolites biosynthesis, transport and catabolism; R: General function prediction only; S: Function unknown; T: Signal transduction mechanisms; U:Intracellular trafficking, secretion, and vesicular transport; V: Defense mechanisms).

泛基因集中除去核心基因和特异基因,剩余的基因被称为附属基因,又称非必需基因,可增强菌株的生长优势或加强环境适应[

32]。母乳分离源菌株的核心基因数量为1 832个,附属基因数量为2 823个。血液分离源菌株的核心基因数量为1 799个,附属基因数量为3 335个。皮肤分离源菌株的核心基因数量为1 405个,附属基因数量为5 945个,结果如图3B所示。皮肤源和血液源菌株的核心基因数量较少,可能与这2种分离源相对开放有关,菌株获得了更多外源基因去适应环境;而母乳源菌株的核心基因数量最多,这可能与母乳这种特殊生境有关,母乳环境营养丰富且正常状态下无其他病原菌,细菌基因组可通过丢失一些非必要基因来更好地适应营养丰富的环[28]

2.4 系统发育树分析

为评估表皮葡萄球菌菌株之间的遗传距离,本研究基于1 267个核心基因采用NJ法构建了系统发育树。如图4所示,表皮葡萄球菌群体可大致分为2个进化分支:Clade 1主要为体表分离源(皮肤),Clade 2主要为体内分离源(母乳及血液)。在Clade 2中,菌株在分离源上也表现出明显的聚类趋势,母乳源菌株聚为一类,血液源菌株聚为一类。这一结果与ANI值分析基本一致,表明菌株的聚类与其分离源存在一定的相关性。Byrd[

33]研究报道并证实,人类皮肤上含有丰富的葡萄球菌属成员,包括与人类皮肤共生的表皮葡萄球菌。此外,一项基于母乳细菌培养的研究发现,所有母乳样本中的细菌与从母亲乳头培养的细菌相[34],说明母体皮肤微生物可通过乳头进入并定居乳腺,最终出现在母乳中。上述结果表明表皮葡萄球菌很可能也通过这种方式进入并定居于母乳中,进而发生了一系列适应性进化。

fig

图4  基于373株表皮葡萄球菌的1 267个核心基因构建的系统发育树。0.01代表比例标尺,分支上的数值代表置信度。

Figure 4  Phylogenetic tree based on 1 267 core genes of 373 strains of Staphylococcus epidermidis. The value of 0.01 represents the sequence deviation value, the number on the branch point represents the confidence value.

2.5 功能基因注释

为了对表皮葡萄球菌的功能基因进行初步研究,本研究基于COG数据库对373株表皮葡萄球菌进行功能基因注释。如图3C所示,373株菌株的主要功能为未知功能(S),其次是氨基酸转运与代谢(E) (15%)、辅酶转运与代谢(H) (9%)、核糖体结构和生物合成(J) (7%)及无机离子转运与代谢(P) (6%)等。

对不同分离源菌株的主要功能进行比较发现,3种分离源的菌株在主要功能上并无显著差异(P>0.05),表明不同分离源的表皮葡萄球菌在主要功能上表现出较高的稳定性。

2.6 耐药基因

为了探究不同分离源菌株在耐药基因携带上的差异,本研究通过耐药基因数据库对373株表皮葡萄球菌基因组进行注释。注释结果显示,373株表皮葡萄球菌共鉴定出13种潜在的耐药基因,且3种分离源菌株在耐药基因数量上存在显著差异(P<0.05,图5A)。母乳源分离株的耐药基因种类为10种,数量为1-7个;血液源分离株的耐药基因种类为11种,数量为1-9个;皮肤源分离株的耐药基因种类为12种,数量为1-8个。母乳源菌株的耐药基因携带数量显著低于皮肤源和血液源菌株(P<0.05),且耐药基因种类也是3种分离源中最少的。在3种分离源中,血液源菌株的耐药基因携带率高于皮肤源和母乳源菌株。这可能与血液源菌株均分离自败血症患者的血液有关,抗生素在败血症治疗过程中发挥着重要的作[

35],长期使用抗生素可通过选择性压力促使细菌发生基因突变或获得耐药基因,进而导致菌株耐药性的形成。此外,基因层面的耐药基因检出仅表明该菌株具有耐药的可能性,这与叶亚菲等的研究结论一[36]。细菌为在自然环境中生存,其某些结构基因编码产物具有外排泵功能,可将菌体内的特定物质(代谢产物、有害物质、抗菌药物等)排出菌体,表皮葡萄球菌中的norAqacA/B基因可能属于此类基因,但其相关机制仍有待研[36]

fig

图5  373株表皮葡萄球菌耐药基因相关信息。A:不同分离源菌株在耐药基因数量上差异分析;B:373株表皮葡萄球菌耐药基因存在与缺失热图(0代表缺失;1代表存在)。

Figure 5  Related information of 373 strains of epidermidis staphylococcus drug resistance genes. A: The number of resistance genes between strains from different isolates; B: Heat map of the presence and deletion of antimicrobial resistance genes in 373 strains of Staphylococcus epidermidis (0 represents missing and 1 represents present).

为了进一步了解菌株耐药基因的分布是否与分离源有关,绘制了耐药基因存在与缺失的热图,结果如图5B所示。结果显示,仅有少数耐药基因(mecAqacA/B)的分布与分离源存在明显相关性。其中,mecA在皮肤源菌株中的携带率显著低于母乳源和血液源菌株(P<0.05),而qacA/B在母乳源分离株中的携带率显著低于皮肤源和血液源菌株(P<0.05)。mecA基因可编码产生青霉素结合蛋白,使细菌对β-内酰胺类抗生素的亲和力下降,从而引发对甲氧西林的耐[

37]。在3种分离源中,mecA基因在血液源菌株中的携带率最高(检出率为94%),而在皮肤源菌株中的携带率最低(检出率为27%)。甲氧西林属于青霉素类抗生素,主要用于治疗败血症,而血液源表皮葡萄球菌的提供者均为败血症患者,这也能解释mecA基因在血液源菌株中高携带率的原因,可能是在长期暴露于抗生素的选择性压力下,血液源菌株通过基因突变或水平基因转移等途径获得了耐药基[38]qacA/B是一种抗生素外排泵基因,qacA/B可使菌株对消毒剂类物质具有一定耐药[39],该基因在血液源菌株中的携带率最高(携带率为67%),皮肤源菌株次之(携带率为39%),母乳源菌株最低(携带率为23%)。

细菌主要通过产生钝化酶、药靶变异、药物外排和膜渗透性改变等4种机制形成耐药性,其中由外排泵介导的耐药性最为普[

36]。373株表皮葡萄球菌耐药基因携带情况如图5B所示,norA基因的携带率为97%,mecA基因携带率为58%,mecR1基因携带率为38%,qacA/B基因携带率均为36%,aac(6')-le-aph(2')-la基因携带率为35%,其余耐药基因[cfrAfexAmsrAvga(A)、vga(B)、vga(A)LCtet(K)]的携带率均低于35%。其中norA基因在3种分离源中携带率均高于95%,因此该基因可能是一种固有耐药基因,这与叶亚菲[36]的结论一致。norA基因是一种抗生素外排泵基因,且外排泵基因在环丙沙星和左氧氟沙星耐药性中起着关键作[36],表明373株表皮葡萄球菌可能对环丙沙星和左氧氟沙星具有一定的耐药性。

2.7 毒力基因

Severn[

6]报道,表皮葡萄球菌已逐渐成为一种常见的医院病原体,特别是对免疫功能低下的患者会造成相关感染。一般认为毒力因子是致病菌入侵、黏附、攻击宿主免疫系统的功能基因。因此,本研究通过与毒力基因数据库(virulence factors of pathogenic bacteria, VFDB)进行比对,在373株表皮葡萄球菌中共鉴定出18种毒力基因。表皮葡萄球菌携带的毒力基因主要编码黏附素、荚膜多糖、胞外酶、表面蛋白等功能蛋白,这些毒力基因在表皮葡萄球菌感染宿主时,通过编码毒力因子使表皮葡萄球菌对宿主细胞产生黏附、定殖、抗吞噬和入侵等作用。平均每株表皮葡萄球菌携带16种毒力基因,其中血液源和皮肤源菌株携带毒力基因种类为16种,母乳源菌株携带毒力基因种类为15种,且3种分离源菌株在毒力基因数量上存在显著差异(P<0.05,图6A)。

fig

图6  373株表皮葡萄球菌毒力基因相关信息。A:不同分离源菌株在毒力基因数量上差异分析;B:373株表皮葡萄球菌毒力因子存在与缺失热图;0代表缺失,1代表存在。

Figure 6  Related information of 373 strains of Staphylococcus epidermidis virulence genes. A: The differences in the number of virulence genes between strains from different isolates; B: Heat map of the presence and deletion of virulence factors in 373 strains of S. epidermidis; 0 represents missing and 1 represents present.

为了解毒力基因的分布是否与菌株分离源有关,本研究利用表皮葡萄球菌的毒力基因存在与缺失情况绘制了热图(图6B),发现毒力基因的分布与分离源存在一定相关性。统计结果显示,3种分离源菌株携带毒力基因数量的差异显著(P<0.05),其中血液源菌株携带量最高,而母乳源菌株最低。血液源、皮肤源和母乳源菌株均含有数量不等的icaA/B/C/D/R基因,其中血液源和皮肤源菌株的该类基因携带率显著高于母乳源菌株(P<0.05)。表皮葡萄球菌主要可分为侵染型和共生[

40],而icaA/B/C/D/R基因与生物膜的形成有关,是表皮葡萄球菌的重要判断标准致病因子。其中,101株血液源菌株中76株携带icaA/B/C/D/R (检出率为75.2%);120株皮肤源菌株中21株携带该基因(检出率为17.5%);而152株母乳源菌株中仅有5株携带该基因(检出率为3.2%),即母乳源菌株在生物膜生成功能上低于血液源和皮肤源菌株。此外,slrA在血液源分离株中的携带率为100.0%,而在皮肤源和母乳源菌株中未被检测到。slrA作为一种黏附基因,可编码多种表面蛋白,是重要的毒力因子,涉及细菌对宿主细胞上皮细胞的黏[41]。它通过识别宿主细胞表面的黏附基质分子,促进细菌黏附和组织定殖,从而引发感染。上述结果表明,血液源表皮葡萄球菌的黏附性和定殖能力高于皮肤源和母乳源菌株。

3 讨论与结论

表皮葡萄球菌广泛存在于皮肤、母乳以及血液中,母乳中的细菌对婴幼儿肠道初始菌群的建立及免疫力的提高起到至关重要的作用。然而,目前关于母乳源表皮葡萄球菌的遗传背景和功能基因的研究相对较少。本研究通过对3种分离源共373株表皮葡萄球菌进行比较基因组学研究,发现不同分离源的表皮葡萄球菌在诸多方面存在显著差异。系统发育树结果显示,373株表皮葡萄球菌可分为2个分支且呈现聚集特性,其中体内分离源(母乳源和血液源)菌株的亲缘关系更近。表皮葡萄球菌为适应不同环境而发生了适应性进化,主要体现在基因组大小、CDs数量、附属基因、毒力因子及耐药基因等方面。在毒力因子和耐药基因分析方面,3种分离源菌株携带毒力因子和耐药基因的数量存在显著差异,均呈现血液源菌株最高、母乳源菌株最少的特点。在生物膜合成相关基因icaA/B/C/D/R上,母乳源菌株的携带率最低(3.2%),皮肤源菌株次之(17.5%)而血液源菌株最高(75.2%)。本研究结果表明,母乳源表皮葡萄球菌相对安全,且表皮葡萄球菌为适应母乳环境发生了适应性进化。

作者贡献声明

赵乾:参与实验方法设计,实际调查研究,实验结果可视化,论文初稿撰写,数据整理与管理;李伟程:参与实验方法设计,软件开发与程序设计;李瑜:研究项目管理;孙佳琦:研究项目管理;钟智:研究资源采集;张和平:研究概念生成,研究资源采集,实验设计验证与核实,研究课题监管与指导,论文审阅与修订,研究项目管理。

利益冲突

作者声明不存在任何可能会影响本文所报告工作的已知经济利益或个人关系。

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