
中国科学院微生物研究所,中国微生物学会,中国菌物学会
文章信息
- 王滢, 徐晓, 石靖晶, 尹彩萍, 翁垆霞, 郭威, 张应烙. 2018
- Ying Wang, Xiao Xu, Jingjing Shi, Caiping Yin, Luxia Weng, Wei Guo, Yinglao Zhang. 2018
- 黑翅土白蚁共生真菌BYSTW3的抗菌活性代谢产物
- Antimicrobial metabolites of BYSTW3, a symbiotic fungus from Odontotermes formosanus
- 微生物学报, 58(6): 1141-1148
- Acta Microbiologica Sinica, 58(6): 1141-1148
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文章历史
- 收稿日期:2018-03-09
- 修回日期:2018-04-23
- 网络出版日期:2018-04-27
2. 安徽农业大学生命科学学院, 安徽 合肥 230036
2. School of Life Sciences, Anhui Agricultural University, Hefei 230036, Anhui Province, China
Yinglao Zhang, Tel:+86-551-65786129, E-mail:zhangyl@ahau.edu.cn
在农业日渐发展的今天,化学农药虽然被广泛应用,但由于其对环境和人类健康的不利影响,生物源农药作为一种替代品渐渐走进了人们的视野,且引起了各方面的重视[1-2]。生物源农药有许多优势,如农用抗生素易被土壤微生物分解而不污染环境,且其对人畜安全,选择性高[3]。文献报道昆虫共生真菌能产生丰富的新型次级代谢产物[4],可能是新型生物源农药的重要来源,如从蜻蜓肠道真菌Paraphaeosphaeria sp. QTYC11中分离到的lunatoic acid C具有很好的抗植物致病真菌活性[5];从象白蚁巢穴共生真菌的活性次级产物中发现可作为杀菌剂的酸类化合物[6]。另外,已有研究表明,昆虫共生菌是微生物新种的重要来源,如White和Strongman在蜉蝣中发现了2株新真菌物种[7];Harrington等从甲虫中分离得到4株真菌新种[8]。因此,昆虫共生微生物菌群是发现新型活性次级代谢产物和新物种的重要来源,具有重要的研究价值。本研究以黑翅土白蚁的共生真菌BYSTW3为研究对象,对其进行鉴定并分离纯化其抗菌次生代谢产物,旨在为开发抗菌生物农药等奠定一定的基础。
1 材料和方法 1.1 材料 1.1.1 样品采集: 供试白蚁于2017年2月捕自浙江师范大学(29°00'17.37″N, 119°29'54.84″E)校内阴暗潮湿的枯草堆与腐木的交界处。 1.1.2 供试种子和病原菌: (1) 供试致病细菌:金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,ATCC 6538)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis, ATCC 6633)、大肠杆菌(Escherichia coli, ATCC 8739)。(2)供试植物病原真菌:杨树溃疡病菌(Dothiorella gregaria)、番茄早疫病菌(Alternaria solani)、小麦赤霉病菌(Gibberella zeae)、黄瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum)、苦瓜枯萎病菌(F. oxysporum f. sp. mornordicae)、玉米弯孢叶斑病菌(Curvularia lunata)苹果树腐烂病菌(Valsa mali)和棉花黄萎病菌(Verticillium dahilae)。上述病原菌均保藏于浙江师范大学微生物实验室。(3)杂草种子:稗草(Echinochoia crusgalli L.)采自浙江师范大学实验稻田。 1.1.3 培养基: M7培养基;麦芽浸汁培养基(MEA培养基);牛肉膏蛋白胨培养基(NA培养基)、马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA培养基)。 1.1.4 主要仪器与试剂: 超净工作台、紫外分析仪、恒温培养箱、恒温培养振荡器、高压灭菌锅、旋转蒸发仪、电子分析天平、PCR反应扩增仪(加拿大BBI公司)、SW-CJ-1D洁净工作台(江苏苏洁净化设备厂)、DK-8D型电热恒温水槽(上海森信实验仪器有限公司)、DYY-8型稳压稳流电泳仪(上海琪特分析仪器有限公司)、YXJ-2离心机(湘仪离心机仪器有限公司)、H6-1微型电泳槽(上海精益有机玻璃制品仪器厂)、移液枪(加拿大BBI公司)等。乙酸乙酯(分析纯)、甲醇(分析纯)、二氯甲烷(分析纯)等。 1.2 菌株的分离纯化将捕捉到的黑翅土白蚁饥饿处理24 h,然后于无菌条件下用无菌水洗涤3次,置于已灭过菌的研钵中,加少量无菌水在研钵中研磨,并将研磨液梯度稀释成10–1、10–2、10–3,分别取各稀释液200 μL涂布于M7培养基平板上,后于28 ℃恒温箱中培养。待菌落长出后,使用接种钩挑取少量菌丝,进行再纯化,最后保存于MEA试管斜面中,4 ℃冷藏备用。
1.3 菌株BYSTW3的鉴定 1.3.1 形态学鉴定: 将事先纯化好的菌株BYSTW3接种到MEA平板中,于28 ℃恒温培养箱中培养,每3 d定时观察并记录其生长状态。利用光学显微镜观察其培养性状、微观形态特征,并索引相关文献,比对观察结果,初步确定其分类地位。 1.3.2 分子学鉴定: 将培养3–4 d的新鲜菌体作为提取DNA的材料,参照新型快速真菌基因组DNA提取试剂盒说明书提取菌株的DNA。采用文献[9]中的方法,以提取的DNA为模板,选用ITS1 (forward): 5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′,ITS4 (reverse): 5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′作为通用引物,对菌株ITS-rDNA序列进行PCR扩增。将得到的PCR扩增产物送往上海生工公司测序。将最终所得的ITS序列,按相似性高低对目标菌株进行BLAST比对分析,选取不同相似度序列,利用MEGA 5.0软件进行系统发育分析,采取邻位相接法(Neighbor-joining,NJ)构建系统发育树,同时进行1000次自举分析(Bootstrap),分析所得的Bootstrap值标记在各分支上,最终确定菌株的分类地位。 1.4 BYSTW3的发酵产物提取将分离得到的菌株BYSTW3分别接种于装有150 mL ME液体培养基的250 mL三角锥瓶中,30 ℃、150 r/min条件下,摇床培养7 d后所得发酵液经2–3层纱布过滤,滤液用乙酸乙酯萃取2–3次,萃取液经减压旋蒸浓缩得到粗浸膏。
1.5 抗细菌活性测定采用滤纸片法对BYSTW3的粗提物和单体化合物进行抗菌活性测试:将菌株的粗提物和阳性对照药物(硫酸庆大霉素)配制成浓度为6 mg/mL的溶液,用0.22 μm滤膜过滤后,备用。移取5 μL溶液均匀洒在直径为5 mm的滤纸片上,将滤纸片均匀贴在涂布有细菌悬浊液的平板上,于28 ℃恒温生化培养箱中倒置培养。
1.6 抗真菌活性测定采用生长速率法对BTSTW3粗提物进行植物致病真菌的抗菌活性测试:将粗提物用丙酮配成浓度为1 mg/mL的母液,备用。分别吸取1 mL母液与9 mL MEA培养基于无菌培养皿中,充分混匀后得到最终浓度为100 μg/mL的溶液。以等量丙酮作为空白对照。将活化好的植物致病真菌用无菌打孔器打成直径为5 mm的菌块,置于上述培养基上,每个处理重复3次,培养3–5 d后,待空白对照菌块生长到20 mm左右,采用十字交叉法测量供试菌菌落直径。按如下公式(1)计算抑制率。
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公式(1) |
粗提物用有机溶剂溶解后与硅胶(100–200目)等比例拌样,而后进行硅胶柱(200–300目硅胶压柱)等梯度洗脱,将不同极性的馏分通过硅胶柱、凝胶柱、HPLC等反复分离纯化得到单体化合物。通过化合物的波谱数据(1H-NMR、13C-NMR、HR-ESI-MS等谱图),参考相应文献对活性单体化合物的结构进行鉴定。
2 结果和分析 2.1 菌株BYSTW3的初步鉴定如图 1所示,在MEA培养基中,BYSTW3菌落生长较为缓慢,培养25 d左右后,菌落半径可达20–25 mm。菌落表面干燥,菌丝具放射状纹理,边缘不整齐,培养初始为金黄色,延长培养时间后菌落颜色渐渐加深,呈现出棕褐色;菌落背面也由初始的金黄色逐渐加深。在光学显微镜下,菌丝呈透明状且有隔膜,分生孢子呈球形,与部分格孢腔目真菌无性性孢子类似,但未发现有性型孢子[10]。
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图 1 BYSTW3菌株的菌落(A)和分生孢子(400×) (B) Figure 1 Colony of strain BYSTW3 (A) and The conidium of BYSTW3 (400×) (B). |
通过测序得到该菌ITS基因序列的长度为521 bp (序列号为MG820090),在NCBI上通过BLAST分析比对,发现与该菌序列相似度最高的菌株为格孢腔目真菌Pleosporales sp. (序列号HQ914849),相似度为92.6%,进一步获取其不同相似度的菌株20株,在软件MEGA 5.0上构建系统发育树(图 2),从发育树上来看,该菌株单独分支。另外,2012年Zhang等对孢腔目真菌Pleosporales做了比较详细的系统发育分析[10],我们的目标菌株与已知的孢腔目真菌ITS序列相似度低,因此,结合形态学鉴定,可初步确定菌株BYSTW3为格孢腔目真菌的潜在新种。
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图 2 基于BYSTW3菌株ITS-rDNA基因序列所构建的系统发育树 Figure 2 System development tree constructed based on BYSTW3 strain ITS-rDNA gene sequence. |
2.2 粗提物的抗细菌活性
菌株BYSTW3的粗提物对金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、大肠杆菌3种致病细菌的生长抑制活性如图 3所示。当供试浓度为30 μg/滤纸片时,粗提物对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌均表现出一定的抑菌活性,但与阳性对照硫酸庆大霉素活性效果(抑菌圈直径均 > 20 mm)相比,抑制程度相对较弱;粗提物对枯草芽孢杆菌未表现出抑菌活性。
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图 3 BYSTW3粗提物对3种致病细菌的生长抑制活性(30 μg/滤纸片) Figure 3 Inhibitory activity of crude extracts against three pathogenic bacteria (30 μg/disc). Results are means±SD of three parallel measurements. |
2.3 粗提物的抗真菌活性
菌株BYSTW3的粗提物对以下8种植物致病真菌的生长抑制作用如表 1所示。在测试浓度为100 μg/mL时,粗提物对苹果树腐烂病菌和苦瓜枯萎病菌表现出中等强度的抑制活性,分别为54.5%和53.4%;另外,粗提物除对杨树溃疡病菌和小麦赤霉病菌几乎不表现抑制作用之外,对剩余的4种植物致病真菌的生长均表现出一定的抑制活性,抑制率范围为15%–40%。
Phytopathogens | Crude extract | Cycloheximide | CK | |||
a | b | a | b | |||
V. mali | 20.0±1.3 | 54.5±3.8 | 5.0±0.0 | 100±0.0 | 38.0±3.2 | |
D. gregaria | 28.5±2.1 | 8.5±1.3 | 5.2±0.4 | 99.7±1.6 | 30.7±2.7 | |
G. zeae | 28.3±1.3 | 5.7±0.8 | 5.2±0.4 | 99.1±2.3 | 29.7±1.6 | |
A. solani | 16.8±3.8 | 37.1±8.1 | 5.3±0.5 | 98.2±2.7 | 23.8±3.1 | |
F. oxysporum f. sp. mornordicae | 19.5±8.0 | 53.4±1.4 | 5.3±0.5 | 99.2±1.7 | 36.1±2.4 | |
F. oxysporum f. sp. cucumerinum | 24.2±5.0 | 15.9±11.7 | 5.2±0.4 | 99.3±1.8 | 27.8±3.1 | |
C. lunata | 27.0±9.9 | 21.1±10.0 | 5.3±0.5 | 98.6±2.1 | 29.3±2.9 | |
V. dahliae | 20.2±3.5 | 26.3±17.4 | 5.2±0.4 | 99.1±2.2 | 23.9±4.6 | |
“a” means colony average diameter/mm; “b” means inhibiting rate/%; CK means blank control; the concentration of compounds is 100 μg/mL. |
2.4 活性代谢产物的结构鉴定
通过多种色谱方法,我们从目标菌株BYSTW3乙酸乙酯的粗提物中分离纯化得到3个次级代谢产物。经其波谱数据分析并查阅相关文献,将这3个化合物确定为Physcion (1)、FK-17-p2a (2)、Citrinin (3) (图 4)。
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图 4 化合物1–3的结构图 Figure 4 Structures of compounds 1–3. |
化合物1:橙黄色粉末,易溶于二氯甲烷。经正源高分辨电喷雾质谱HR-ESI-MS分析可知准分子离子峰[M+H]+ m/z 285.0758,计算值为C16H13O5 285.0758。因此推测该化合物分子式为C16H12O5。化合物1的波谱数据如下:1H NMR (CDCl3, 400 MHz) 7.63 (1H, br, s, 4-H), 7.37 (1H, d, J=2.5, 5-H), 7.09 (1H, br, s, 2-H), 6.69 (1H, d, J=2.6, 7-H), 3.94 (3H, s, 16-H), 2.45 (3H, s, 15-H); 13C NMR (CDCl3, 150 MHz) 191.0 (C-9), 182.2 (C-10), 166.5 (C-6), 165.4 (C-8), 162.7 (C-1), 148.6 (C-3), 135.4 (C-14), 133.4 (C-11), 124.7 (C-2), 121.5 (C-4), 113.8 (C-12), 110.4 (C-13), 108.4 (C-5), 106.9 (C-7), 56.3 (C-(16-OCH3), 22.3 (C-(15-CH3))。该结构的谱图数据与文献[11]报道的相一致,因此将该化合物最终鉴定为Physcion。
化合物2:白色针状结晶,易溶于甲醇和丙酮。根据其正源高分辨电喷雾质谱HR-ESI-MS得出的准分子离子峰[M+H]+ m/z 253.1067,计算值C13H17O5 m/z 253.1076,因此推测该化合物的分子式为C13H16O5。化合物2的波谱数据如下:1H NMR (Actone-d6, 600 MHz) 12.82 (1H, s, 1-OH), 9.90 (3H, s, 12-H), 6.42 (1H, s, 4-H), 4.31 (1H, s, 10-H), 4.21 (2H, s, 7-H), 2.72 (2H, m, 9-H), 1.22 (3H, d, J=9.3, 11-H); 13C NMR (Actone-d6, 150 MHz) 207.2 (C-8), 195.1 (C-12), 164.8 (C-1), 163.4 (C-5), 139.2 (C-3), 113.7 (C-6), 111.5 (C-4), 110.9 (C-2), 64.8 (C-10), 52.2 (C-9), 47.1 (C-7), 23.9 (C-11), 7.3 (C-13)。该结构的谱图数据与文献[12]报道的相一致,因此将该化合物最终鉴定为FK-17-p2a。
化合物3:黄色针状结晶,易溶于二氯甲烷,微溶于甲醇。根据其正源高分辨电喷雾质谱HR-ESI-MS得出的准分子离子峰[M+H]+ m/z 251.0911,计算值C13H15O5 m/z 251.0919,因此推测该化合物的分子式为C13H14O5。化合物3的波谱数据如下:1H NMR (CDCl3, 400 MHz) 15.88 (1H, s, 8-OH), 15.13 (1H, s, 12-OH), 8.75 (1H, s, 1-H), 4.79 (1H, q, J=6.7, 3-H), 3.00 (1H, q, J=7.1, 4-H), 2.04 (3H, s, 11-H), 1.37 (3H, q, J=6.7, 9-H), 1.25 (3H, q, J=7.2, 10-H); 13C NMR (CDCl3, 150 MHz) 184.0 (C-6), 177.4 (C-8), 174.7 (C-12), 162.9 (C-1), 139.2 (C-4a), 123.3 (C-5), 107.6 (C-8a), 100.5 (C-7), 81.8 (C-3), 34.8 (C-4), 18.7 (C-9), 18.4 (C-10), 9.6 (C-11)。该结构的谱图数据与文献[13]报道的相一致,因此将该化合物最终鉴定为Citrinin。
2.5 单体化合物的细菌活性3种单体化合物的抗细菌活性如表 2所示。由表可知,化合物3对所有测试致病细菌均表现出很好的抗菌活性,对大肠杆菌、枯草芽孢杆菌的抑菌圈直径分别为21.8 mm和24.7 mm,均略高于阳性对照;对金黄色葡萄球菌的抑菌活性与阳性对照相当,抑菌圈直径为20.6 mm。化合物2在一定程度上对3种致病细菌均表现出抑制活性。化合物1则对革兰氏阳性菌有一定的抑制作用。
Compounds | Inhibition zone/mm | ||
E. coli | B. subtilis | S. aureus | |
1 | – | 7.3±0.8 | 8.8±0.6 |
2 | 6.5±0.1 | 6.5±0.5 | 9.8±0.8 |
3 | 21.8±1.1 | 24.7±0.3 | 20.6±0.7 |
Gentamycin sulfate | 20.7±0.3 | 24.2±1.5 | 23.0±0.5 |
“–” means no inhibition. |
3 总结和讨论
本研究从黑翅土白蚁中分离得到一株具有生物活性的真菌BYSTW3。结合该菌的形态学特征和分子学特征,初步鉴定该菌隶属于格孢腔目,参照相关文献以及实验所得菌株相似度数据,该菌极有可能是一个潜在新种。活性测试表明,该菌的乙酸乙酯粗提物能中等强度地抑制苹果树腐烂病菌和苦瓜枯萎病菌的生长,抑制率分别为54.5%和53.4%,另外它还表现出一定的抗细菌活性。进一步分离纯化得到3个具有生物活性的单体化合物,其中化合物1也是植物源抗菌活性化合物,主要存在于大黄等蓼科植物中[14];化合物3为抗生素类物质,主要发现于青霉属和曲霉属(曲霉目)真菌的次级代谢物中[15]。化合物1和3均首次从格孢腔目的真菌中分离得到。化合物2表现出一定程度的抗菌活性。化合物3所表现出来的优于阳性对照的抗细菌活性与粗提物微弱的抗细菌活性形成鲜明反差,这可能是粗提物中存在相互拮抗的物质,具体的机理仍需后续深入的研究。由于受到分离所得化合物的含量限制,本实验尚未进一步测试化合物的抗植物致病真菌活性。另外,关于该菌的安全性、其他活性化合物的分离鉴定以及活性作用机理等,还有待于进一步的研究探讨。
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