微生物学报  2022, Vol. 62 Issue (2): 672-685   DOI: 10.13343/j.cnki.wsxb.20210307.
http://dx.doi.org/10.13343/j.cnki.wsxb.20210307
中国科学院微生物研究所,中国微生物学会,中国菌物学会
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文章信息

瞿欢, 胡靖飞, 李施倩, 肖黛, 张路文, 付嘉钰, 赵玉佳, 陈汭, 文翼平, 伍锐, 赵勤, 颜其贵, 文心田, 曹三杰, 黄小波. 2022
QU Huan, HU Jingfei, LI Shiqian, XIAO Dai, ZHANG Luwen, FU Jiayu, ZHAO Yujia, CHEN Rui, WEN Yiping, WU Rui, ZHAO Qin, YAN Qigui, WEN Xintian, CAO Sanjie, HUANG Xiaobo.
不同动物源性细胞系对猪丁型冠状病毒的易感性
Susceptibility of cell lines from different animal species to porcine deltacoronavirus
微生物学报, 62(2): 672-685
Acta Microbiologica Sinica, 62(2): 672-685

文章历史

收稿日期:2021-05-26
修回日期:2021-08-30
网络出版日期:2021-11-08
不同动物源性细胞系对猪丁型冠状病毒的易感性
瞿欢1 , 胡靖飞1 , 李施倩1 , 肖黛1 , 张路文1 , 付嘉钰1 , 赵玉佳1 , 陈汭1 , 文翼平1 , 伍锐1 , 赵勤1 , 颜其贵1 , 文心田1 , 曹三杰1,2,3 , 黄小波1,2,3     
1. 四川农业大学动物医学院, 猪病研究中心, 四川 成都 611130;
2. 农业农村部兽用药物与兽医诊断技术四川科学观测实验站, 四川 成都 611130;
3. 四川农业大学国家级动物类实验教学示范中心, 四川 成都 611130
摘要[目的] 探究猪丁型冠状病毒(porcine deltacoronavirus,PDCoV)能否在不同动物源性细胞系中感染和增殖。[方法] 本研究将PDCoV四川分离株CHN-SC2015接种来自仓鼠、家禽、猴、人和猪的12种细胞系,将病毒在每种细胞系中盲传至少5代并通过逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)、实时荧光定量PCR(RT-qPCR)、间接免疫荧光试验(IFA)和测序鉴定。[结果] PDCoV在Vero、PAM、PK15、ST和LLC-PK1细胞中的P1表现出明显的细胞病变效应(CPE),且在PAM、PK15、ST和LLC-PK1细胞上有不同程度的增殖,但在Vero和PAM细胞的后续传代中CPE逐渐消失;除3种易感细胞外(PK15、LLC-PK1和ST),病毒拷贝数随着传代次数的增加而逐渐降低,而在DEF、Marc-145、HEK-293、ZYM-SIEC02和PAM细胞的P4或P5中不能检测到PDCoV;PCR结果显示,只有在CEF和Vero细胞的P5中还能检测到PDCoV;IFA的结果表明,PDCoV可以感染除BHK-21和ZYM-SIEC02以外的大多数细胞,在PK15、LLC-PK1和ST细胞的P1、P3和P9均可以观察到特异性免疫荧光,因此仅3种细胞系(PK15、LLC-PK1和ST)适合病毒的连续传代,在P9病毒滴度分别可达107.11、107.00和107.37 TCID50/mL;在不同的细胞系中传代后,PDCoV的S基因序列累计有14个核苷酸和相应的12个氨基酸突变。[结论] 本研究表明,PDCoV可在体外感染多种细胞,提示其可能存在跨种传播潜力。
关键词猪δ冠状病毒    细胞系    易感性    感染    跨物种传播    
Susceptibility of cell lines from different animal species to porcine deltacoronavirus
QU Huan1 , HU Jingfei1 , LI Shiqian1 , XIAO Dai1 , ZHANG Luwen1 , FU Jiayu1 , ZHAO Yujia1 , CHEN Rui1 , WEN Yiping1 , WU Rui1 , ZHAO Qin1 , YAN Qigui1 , WEN Xintian1 , CAO Sanjie1,2,3 , HUANG Xiaobo1,2,3     
1. Research Center of Swine Disease, College of Veterinary Medicine, Sichuan Agricultural University, Chengdu 611130, Sichuan, China;
2. Sichuan Science-Observation Experimental Station of Veterinary Drugs and Veterinary Diagnostic Technology, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Chengdu 611130, Sichuan, China;
3. National Teaching and Experiment Center of Animal, Sichuan Agricultural University, Chengdu 611130, Sichuan, China
Abstract: [Objective] To explore whether porcine deltacoronavirus (PDCoV) can infect and proliferate in different animal species-derived cell lines. [Methods] The Sichuan isolate CHN-SC2015 of PDCoV was inoculated in twelve cell lines derived from hamster, poultry, monkey, human and swine. After at least five blindly passages in each cell line, the virus was identified by RT-PCR, RT-qPCR, indirect immunofluorescence assay (IFA), and sequencing. [Results] PDCoV caused distinct cytopathic effect (CPE) in Vero, PAM, PK15, ST, and LLC-PK1 cells at the 1st passage (P1) and proliferated to various degrees in PAM, PK15, ST, and LLC-PK1 cells, while the CPE gradually disappeared during subsequent passages in Vero and PAM cells. Except that in the three susceptible cell lines (PK15, LLC-PK1, and ST), the viral copies of the infected cell lines gradually decreased with the increase in passages, and PDCoV could not be detected at P4 or P5 of DEF, Marc-145, HEK-293, ZYM-SIEC02, and PAM cells. PCR results showed that PDCoV could be detected only in CEF and Vero cells at P5. The IFA results showed that PDCoV could infect other cell lines except BHK-21 and ZYM-SIEC02, and specific immunofluorescence was observed in PK15, LLC-PK1, and ST cells at P1, P3, and P9. Therefore, only three cell lines (PK15, LLC-PK1, and ST) were suitable for serial passage, with the virus titers up to 107.11, 107.00, and 107.37 TCID50/mL at P9, respectively. After passage in different cell lines, CHN-SC2015 accumulated 14 nucleotide mutations corresponding to 12 amino acid mutations. [Conclusion] This study indicates that PDCoV can infect a variety of cells in vitro, suggesting that it may have the potential of cross-species transmission.
Keywords: porcine deltacoronavirus    cell lines    susceptibility    infection    cross-species transmission    

冠状病毒是有囊膜的单股正链RNA病毒,属于套式病毒目、冠状病毒科。正冠状病毒亚科下分为α、β、γ和δ 4个属,是动物和人类的重要病原体,可引起各种呼吸系统、肠道和神经系统疾病[1]。猪流行性腹泻病毒(porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)和传染性胃肠炎病毒(transmissible gastroenteritis coronavirus,TGEV)属于α冠状病毒属,可引起仔猪严重腹泻和死亡[23]。β属的成员引发人类呼吸道感染,包括严重急性呼吸综合征冠状病毒(severe acute respiratory syndrome coronavirus,SARS-CoV)、中东呼吸综合征冠状病毒(Middle East respiratory syndrome coronavirus,MERS-CoV)和新型冠状病毒(SARS-CoV-2)等[45]。δ属主要存在于各种鸟类和猪中[6]。蝙蝠是α和β冠状病毒的重要宿主,禽类被认为是γ和δ冠状病毒的重要宿主[6]。SARS-CoV和MERS-CoV都起源于蝙蝠,并能跨物种传播感染其他动物甚至人类引起新的流行病,提示了冠状病毒在种间传播事件中的潜在风险[7]

猪丁型冠状病毒(porcine deltacoronavirus,PDCoV)可引起哺乳仔猪急性腹泻、呕吐、脱水和死亡,于2012年首次在香港的猪的样品中发现[6]。PDCoV的暴发首先在美国报道,并在2014年迅速蔓延到20多个州,随后多个国家也发生该病的流行,给养猪业造成了严重的经济损失[810]。PDCoV 3′端1/3的基因组主要编码4种结构蛋白,即纤突蛋白(S)、小膜蛋白(E)、膜蛋白(M)和核衣壳蛋白(N)和3种辅助蛋白NS6、NS7和NS7a[11]。S蛋白是一种高度糖基化的I型跨膜蛋白,除了介导病毒进入外,是决定宿主范围和组织嗜性的关键因素,也是宿主免疫应答的主要诱导因子[12]。冠状病毒的跨种传播一直是关注的热点。近年研究表明,PDCoV也具有感染多种动物和细胞的潜力。Li等研究表明,PDCoV可使用哺乳动物和禽类的氨肽酶N (aminopeptidase N,APN)分子作为进入受体,并且可以在体外感染包括人、猪和鸡在内的多种细胞系[13]。PDCoV还可以感染鸡胚并连续传代,接种PDCoV的鸡表现出轻度腹泻并在粪便检测到少量病毒核酸[14]。此外,3–7日龄的小牛也可以感染PDCoV,并且可以持续检测到粪便中的PDCoV核酸和特异性血清IgG抗体,但是没有明显的肠损伤或病理变化[15]。Lednicky等首次报道,PDCoV感染人类,在369名急性无名高热的儿童血样中,检测出了3份变异的PDCoV[16]。这些研究提示,PDCoV存在跨物种传播的潜力,可能具有公共卫生安全风险。

我们前期已分离获得西南地区第1株PDCoV毒株并进行了系统鉴定[17],为了进一步评估PDCoV分离株CHN-SC2015是否也具有跨种感染的风险和潜力,本研究将该毒株在来自仓鼠、家禽、猴子、人和猪的12种细胞系中进行感染和传代,拟筛选高效培养PDCoV的细胞系和为评价其跨种传播风险提供依据。

1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 病毒与细胞系

PDCoV CHN-SC2015株(GenBank登录号:MK355396.1)由本实验室从四川发生腹泻的仔猪中分离[17],并在LLC-PK1细胞中连续传代,取第15代(P15)开展本研究。不同种属的12种细胞系(表 1),包括仓鼠(BHK-21)、猴(Vero、Marc-145)、人(HEK-293、HeLa)、猪(ZYM-SIEC02、PAM、PK15、LLC-PK1、ST)和家禽的2种原代细胞系(CEF、DEF)。猪肠上皮细胞系(ZYM-SIEC02)由西北农林科技大学兽医学院张彦明教授惠赠[18]。CEF和DEF用9日龄SPF鸡胚和鸭胚制备。

表 1. 本研究来自不同物种的细胞系 Table 1. Summary of cell lines from different animal species in this study
Species Origin Cell name ATCC® number
Hamster Baby hamster kidney BHK-21 CCL-10
Poultry Chicken embryo fibroblasts CEF N/A
Duck embryo fibroblasts DEF N/A
Monkey African green monkey kidney Vero CRL-1586
African green monkey kidney Marc-145 CRL-12231
Human Human embryonic kidney HEK-293 CRL-1573
Human cervical carcinoma epithelium HeLa CCL-2
Swine Small intestinal epithelium ZYM-SIEC02 N/A
Porcine alveolar macrophages PAM N/A
Porcine kidney PK15 CCL-33
Porcine kidney LLC-PK1 CL-101
Swine testis ST CRL-1746
N/A: not available.

1.1.2 主要试剂

DMEM、小牛血清购自Gibco公司;胎牛血清购自PAN公司;总RNA抽提试剂盒购自生工生物工程(上海)股份有限公司;Rapid Taq Master Mix购自南京诺唯赞生物科技有限公司;PrimeScriptTM RT Reagent Kit、SYBR® Premix Ex TaqTM II、PrimeSTAR Max Premix购自宝生物(大连)有限公司;兔抗PDCoV N蛋白多克隆抗体由本实验室制备;FITC标记的羊抗兔IgG购自博奥森生物技术有限公司。

1.2 PDCoV在不同细胞上的增殖情况

将12种细胞分别铺于T75细胞瓶,待细胞长至90%以上时,PBS洗涤3次,在含有0.5 μg/mL (BHK-21、CEF、DEF和HeLa)、1.25 μg/mL (HEK-293、ZYM-SIE C02)或5 μg/mL (Vero、Marc-145、ST、PK15、PAM和LLC-PK1)胰酶的新鲜DMEM中按感染复数(MOI)为0.1接种PDCoV,孵育1.5 h,弃液,加入含胰酶或2%血清(HeLa细胞)的维持液继续培养。在感染后12、24、36、48、60、72 h分别收集500 μL上清进行RT-qPCR分析,并观察CPE。

1.3 PDCoV在不同细胞上的传代培养

细胞长至90%以上时,接种PDCoV孵育1.5 h,弃液后加入含胰酶或2%血清(HeLa细胞)的维持液于37 ℃培养4 d,将细胞反复冻融3次,在4 ℃下以8 000 r/min离心10 min收集上清液。所收病毒液继续传代,病毒在每个细胞系中盲传至少5代,进行RT-PCR及RT-qPCR检测。

1.4 RT-PCR及RT-qPCR鉴定

提取不同代次病毒液的总RNA,反转录获得cDNA,针对NS7基因的上、下游引物:5′-AT GGCTACTGGCTGCGTTAC-3′和5′-GCGTTTC CTGGGCTGATT-3′进行RT-PCR鉴定。制备含有PDCoV M基因序列的pMD18-T质粒建立标准曲线,使用M基因的上、下游引物:5′-CCA ATGGGTACATGGAGGT-3′和5′-GTGGCGGAT TTCTAACTGA-3′进行RT-qPCR检测,测定PDCoV RNA的含量,反应条件如下:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40个循环;72 ℃ 10 min。

1.5 易感细胞TCID50测定

分别取PDCoV在LLC-PK1、PK15和ST细胞上P1、P3与P9的病毒液,在LLC-PK1细胞上测定病毒滴度。取100 μL病毒液,按照10倍梯度进行系列稀释(10–1–10–10),同时设置两列空白对照,待LLC-PK1长满96孔细胞板,PBS洗2次后加入稀释好的病毒液,每个稀释度8个重复,37 ℃孵育1.5 h,弃病毒液,加入150 μL含5 μg/mL胰酶的维持液,37 ℃继续培养。每日观察LLC-PK1细胞病变情况,连续观察4–7 d,最后按照Reed和Muench氏法计算TCID50[19]

1.6 不同代次IFA鉴定

细胞铺于含细胞爬片的12孔板中,按MOI=0.04接种PDCoV,感染36 h后,弃去培养基,用PBS洗涤1次,4%多聚甲醛固定30 min;用PBS洗涤3次,0.5% Triton X-100通透30 min;用PBS洗涤3次后,用2% BSA 37 ℃封闭1 h。然后在4 ℃孵育兔抗PDCoV N蛋白抗体(1:200稀释)过夜;用PBST (PBS+0.1% Tween-20)洗涤后,避光孵育FITC标记的羊抗兔IgG (1:500稀释) 1 h。最后一次洗涤后取出爬片,DAPI进行核染。

1.7 不同细胞传代后S基因测序分析

参照CHN-SC2015株的S基因序列设计上、下游引物:5′-CACCAGGACGCCTTCTTGTGA GG-3′和5′-CTACCATTCCTTAAACTTAAAGGA CG-3′,从不同细胞系传代样品中扩增S基因并与LLC-PK1-P15相比用MEGA-X软件进行测序比对,分析核苷酸及氨基酸突变情况。程序如下:98 ℃ 5 s,55 ℃ 15 s,72 ℃ 30 s,34个循环。

1.8 不同物种源APN的进化树分析

为分析不同物种源APN的序列差异及其在不同种属细胞感染中的潜在相关性,从GenBank中下载25个不同物种的APN序列,利用MEGA 7软件,采用邻接法,基于APN的氨基酸序列构建系统发育树。

1.9 数据分析

本研究所有代表性结果都进行3次重复实验,结果用GraphPad Prism 8软件进行统计分析。显著性分析采用Student's t检验。统计显著性记为*:P < 0.05;**:P < 0.01;***:P < 0.001;nsP > 0.05。

2 结果与分析 2.1 PDCoV在不同物种来源细胞系上的CPE

PDCoV CHN-SC2015株以MOI=0.1感染来自不同物种的12种细胞系,并观察细胞在不同时间点的生长状态。HeLa细胞对胰酶敏感,因此用不含胰酶,含2%胎牛血清的DMEM作为维持液。结果显示,PDCoV在Vero、PAM、PK15、ST和LLC-PK1细胞中的P1表现出明显的CPE (图 1),但在Vero和PAM细胞的后续传代中CPE逐渐消失。本研究PDCoV在Vero细胞P1中有大量的细胞融合,并且在48 h可以显著观察到合胞体的形成(图 2A),但从P3起未观察到明显的合胞体。

图 1 接种PDCoV CHN-SC2015株后72 h的不同细胞系中的CPE Figure 1 CPEs in different cell lines inoculated with PDCoV CHN-SC2015 at 72 hpi. Original magnification, ×100.

图 2 PDCoV在不同物种来源细胞系上的增殖情况 Figure 2 Proliferation of PDCoV in cell lines from different animal species. A: cell fusion and syncytium formation were observed on Vero cells inoculated with PDCoV at 48 hpi; B: proliferation of PDCoV in hamster (BHK-21) cells; C: proliferation of PDCoV in poultry (CEF and DEF) cells; D: proliferation of PDCoV in monkey (Vero and Marc-145) cells; E: proliferation of PDCoV in human (HEK-293 and HeLa) cells; F: proliferation of PDCoV in swine (ZYM-SIEC02, PAM, PK15, ST, and LLC-PK1) cells. The viral loads of PDCoV was determined by the standard curve and is expressed as the mean (log10 copies/μL)±standard deviation (SD). The P-value < 0.05 was considered statistically significant compared with those at 12 hpi.

2.2 PDCoV在不同种属细胞系上的增殖鉴定

为了确定PDCoV是否在这些细胞系上增殖,在不同的时间点收集PDCoV感染细胞P1的上清液,用RT-qPCR检测病毒的M基因RNA水平。结果表明:(1) 病毒拷贝数在BHK-21细胞中几乎没有变化(图 2B);在禽源(CEF和DEF)和ZYM-SIEC02细胞中随时间逐渐下降(图 2CF);(2) 在猴源(Vero和Marc-145)和人源(HEK-293和HeLa)细胞中,病毒拷贝数略有增加,但之后逐渐减少(图 2DE);(3) 病毒在猪源PAM、PK15、ST和LLC-PK1细胞上有明显的增殖。除此之外,PDCoV在ST细胞中的病毒拷贝数最高(图 2F)。

2.3 PDCoV在不同种细胞上的连续传代

为了确定PDCoV CHN-SC2015株能否在12种细胞系中稳定传代,将病毒在每种细胞系中盲传至少5代,结果显示,3种细胞易感,9种相对不易感。收集在9种非易感细胞中传不同代次的病毒液进行RT-qPCR和RT-PCR检测,而通过在LLC-PK1细胞上测定TCID50确定PDCoV在3种易感细胞(PK15、LLC-PK1和ST)上P1、P3和P9的病毒滴度(表 2)。结果显示,(1) 接种PDCoV的非易感细胞系中的8个(除CEF外),病毒RNA载量随着代次的增加而逐渐降低,其中,在DEF、Marc-145、HEK-293、ZYM-SIEC02和PAM细胞的P4或P5中不能检测到PDCoV (图 3)。然而,CEF细胞P2中的病毒RNA载量出现短暂下降,然后P3恢复到与P1相似的水平(图 3B)。PCR结果显示,只有在CEF和Vero细胞的P5中还能检测到PDCoV (图 4)。(2) 随着PDCoV在3个易感细胞系上的连续传代,感染滴度逐渐增加,并且P9比P1增加约10–100倍(表 2)。

表 2. 不同代次PDCoV的感染性滴度(TCID50/mL) Table 2. Infectious titers (TCID50/mL) of PDCoV of different generations
Parameter Cell lines Results of different generations
P1 P3 P9
Infectious titer/(TCID50/mL) PK15 106.00 106.12 107.11
LLC-PK1 105.26 105.12 107.00
ST 106.32 105.55 107.37

图 3 连续传代期间细胞系中PDCoV的病毒含量变化 Figure 3 Viral loads of PDCoV in different cell lines during serial passages. A: viral load of PDCoV in BHK-21 cells; B: viral load of PDCoV in CEF cells; C: viral load of PDCoV in DEF cells; D: viral load of PDCoV in Vero cells; E: viral load of PDCoV in Marc-145 cells; F: viral load of PDCoV in HEK-293 cells; G: viral load of PDCoV in HeLa cells; H: viral load of PDCoV in ZYM-SIEC02 cells; I: viral load of PDCoV in PAM cells. The viral load of PDCoV was determined by the standard curve and is expressed as the mean (log10 copies/μL)±standard deviation (SD). N/D: not detected.

图 4 不同代次的RT-PCR检测 Figure 4 RT-PCR detection of different generations. M: DL2000 marker; N: negative control; P: positive control.

2.4 PDCoV在细胞系中不同代次的IFA鉴定

接种PDCoV后,部分细胞没有出现明显的CPE,因此用抗N蛋白的多克隆抗体进行IFA鉴定是否存在病毒感染。将PDCoV感染的12种细胞系的不同代次(易感细胞PK15、LLC-PK1和ST的P1、P3和P9;其他细胞中的P1、P3和P5)于36 h固定。结果表明:(1) 在BHK-21和ZYM-SIEC02细胞上未观察到PDCoV N蛋白特异性免疫荧光(图 5DE);(2) 病毒N蛋白仅在家禽(CEF、DEF)、猴(Vero、Marc-145)、人(HEK-293、HeLa)和PAM细胞的P1中表达(图 5),而且在HeLa细胞中感染有限,抗原的表达低于其他细胞系(图 5C);(3) 在PK15、LLC-PK1和ST细胞的P1、P3和P9均可以观察到特异性免疫荧光,并且在LLC-PK1细胞中表现出明显的合胞体形成(图 5D),同样,接种PDCoV的ST细胞N蛋白表达水平最高。这些结果表明,大多数细胞不支持PDCoV CHN-SC2015株的稳定传代,只有3种细胞系(PK15、LLC-PK1和ST)适合病毒的稳定增殖。

图 5 PDCoV感染细胞的不同代次的IFA鉴定 Figure 5 Identification of PDCoV-infected cells at different generations by IFA. A: poultry (CEFs and DEFs); B: monkey (Vero and Marc-145); C: human (HEK-293 and HeLa); D: swine (ZYM-SIEC02, PAM, PK15, LLC-PK1 and ST); E: hamster (BHK-21) cells. FITC-conjugated goat anti-rabbit IgG was used as secondary antibody (green). DAPI was used to detect nuclei (blue). Original magnification, ×400.

2.5 PDCoV感染不同细胞后S基因的序列分析

在易感细胞(LLC-PK1、ST和PK15)中,PDCoV连续传代至P15。为了确定不同细胞系传代中PDCoV的S基因是否发生变异,根据PCR结果(图 4)对LLC-PK1、ST、PK15的P15;PAM、DEF、BHK-21的P2;Vero、CEF的P5;HEK-293、HeLa、Marc-145和ZYM-SIEC02的P3扩增完整S基因并测序,与LLC-PK1上P15 (NMDCN0000NN9)比较S基因序列的变化。结果表明,S基因全长3 480个核苷酸,编码1 159个氨基酸,病毒在BHK-21细胞上传代2次,在HeLa、Marc-145和ZYM-SIEC02细胞传代3次后,S基因序列无突变。其他细胞上(NMDCN0000NNA-G)共产生14个核苷酸和相应12个氨基酸的突变,其中1 443和2 277位是同义突变,在突变的氨基酸中,162位氨基酸是位于S1表面的糖基化位点(表 3表 4)。

表 3. PDCoV接种不同细胞系后S基因的核苷酸变异分析 Table 3. Nucleotide variation analysis of the S gene of PDCoV after infection of different cell lines
Passage Nucleotide position
484 500 578 787 1 188 1 443 1 450 1 769 2 277 2 389 2 636 2 767 2 813 3 092
LLC-PK1-P15 G A A G T A C A C G C A A C
ST-P15 G A A G T A C A C G C A A C
PK15-P15 T C A T A A G A C T T A A C
PAM-P2 G A A G T A G T C G C A A C
Vero-P5 T C C T A G C A T G C A A T
HEK-293-P3 G A A G T A C A C G C A A T
CEF-P5 T C A T T A G T C G T A A C
DEF-P2 T C C T A G C A C G C G G T
The colors red, yellow, blue, orange represent the nucleotide A, T, C, G after mutation, respectively.

表 4. PDCoV接种不同细胞系后S基因的氨基酸变异分析 Table 4. Amino acid variation analysis of the S gene of PDCoV after infection of different cell lines
Passage Amino acid position
162 167 193 263 396 484 590 797 879 923 938 1 031
LLC-PK1-P15 D H D V N Q E D S T N T
ST-P15 D H D V N Q E D S T N T
PK15-P15 Y P D L K E E Y L T N T
PAM-P2 D H D V N E V D S T N T
Vero-P5 Y P A L K Q E D S T N I
HEK-293-P3 D H D V N Q E D S T N I
CEF-P5 Y P D L N E V D L T N T
DEF-P2 Y P A L K Q E D S A S I
The colors red, yellow, blue, orange represent the the amino acids corresponding to mutated nucleotide A, T, C, G, respectively.

2.6 不同种属动物APN的系统发育分析

从GenBank获得的25个不同物种的APN序列进行了系统发育分析,结果表明,APN广泛分布于动物物种之间,并形成4个不同的簇和许多小分支,表明APN物种的多样性和特异性(图 6)。其中,仓鼠、鸡与鸭、猴与人和猪的APN序列分布在不同的分支中,与猪的氨基酸序列同源性分别为53.26%、64.02%、65.70%、78.45%和78.64%,而人与猴的APN序列同源性达98.55%,鸡与鸭的APN序列同源性达91.21%。

图 6 不同物种APN氨基酸序列的系统发育分析 Figure 6 Phylogenetic analysis of APN amino acid sequence from different species. The phylogenetic tree was constructed using the neighbor-joining method with bootstrap values calculated from 1 000 trees in MEGA 7 software. Only bootstrap values > 70% are shown at the branch points. Reference sequences obtained from GenBank are indicated by GenBank accession numbers and species names.

3 讨论与结论

多数新发感染人类的病原体来自动物,特别是近年来反复出现并导致流行的冠状病毒。SARS-CoV、MERS-CoV和SARS-CoV-2均能跨物种传播感染人类引起疾病流行,提示了冠状病毒在种间传播事件中的潜在风险[7]。包括人、猴、猪、鸡、蝙蝠等在内的21种细胞系对SARS-CoV显著易感,表明这种蝙蝠来源冠状病毒跨物种传播的可能性[20]。检测猪群中PDCoV时发现,PDCoV与SpCoV HKU17密切相关,表明PDCoV可能从鸟类传播到哺乳动物[6]。PDCoV还可在体外感染鸡肝癌和DF-1细胞以及人的Huh7细胞[13]。但这些研究均只是在细胞上接种1次后检测病毒感染的结果,并不能确定病毒能否在这些细胞上稳定传代。本研究为了掌握CHN-SC2015毒株的适应性,通过连续传代检测分析,证明PDCoV CHN- SC2015株可以感染来自鸡、鸭、猴、人和猪的10个细胞系,但只有3种细胞系(PK15、LLC-PK1和ST)适合PDCoV的连续增殖。Liang等证实,PDCoV可感染鸡胚并继代,且可在P5中检测到病毒核酸,而且接种PDCoV的鸡表现出轻微的腹泻症状[14],本研究CHN-SC2015株可感染鸡胚原代CEF细胞,再次证明PDCoV对鸡的感染潜力。

在细胞培养中,外源蛋白酶通过促进细胞膜融合增强PDCoV的复制,即使没有胰酶,PDCoV也能在LLC-PK1细胞中复制,但无可见的CPE,其病毒滴度相对胰酶处理组更低[21]。本研究通过胰酶耐受试验选择各细胞接毒的最适胰酶浓度,发现HeLa细胞对胰酶敏感,因此用含2%血清的DMEM作为维持液,HeLa细胞感染PDCoV后N蛋白表达水平低于其他细胞系,表明胰酶可能在PDCoV感染过程中发挥重要作用。PDCoV具有广泛的组织嗜性,除了肠道和粪便外,还可以在心、肝、脾、肺、肾和胃等内脏器官中检测到[17]。据报道,来自PDCoV感染主要部位的IPI-2I和IPEC-J2细胞对PDCoV易感,尽管CPE只能在IPEC-J2细胞中传代3次后才能被观察到[2223]。然而,在本研究中,PDCoV CHN-SC2015株不能感染ZYM-SIEC02细胞(一种猪小肠上皮细胞系)[18],可能是不同分离毒株存在不同的细胞易感性。Woo等证实,PDCoV不仅可以感染猪肺组织,在鼻咽样本中也检测到该病毒,表明除了粪-口传播外,呼吸道也可能是PDCoV感染的途径[24]。本研究发现,PDCoV可在体外感染PAM细胞且存在一定水平的增殖,这再次证实,PDCoV具有感染呼吸道的潜力,但PDCoV在PAM细胞上连续传代至P5后用RT-qPCR检测不到病毒,可能与毒株的细胞适应性差异相关,因而CHN-SC2015毒株不完全适应该细胞。

在病毒感染过程中,N端S1与细胞受体结合,C端S2介导膜融合,我们前期研究发现,PDCoV S蛋白的S1-CTD (aa 278–616)区域可能是主要的中和表位[25],本研究结果显示,该区域发生了3个氨基酸突变(表 4)。然而,一些研究表明,冠状病毒的宿主范围在其融合亚基突变后也发生了变化,表明S2区域在宿主范围扩大中也具有显著意义[26],但仍需要进一步的研究来阐明其潜在机制。本研究根据PDCoV在不同细胞系传代后的PCR结果,选择能检测到的最高代次扩增S基因,共发生14个核苷酸和相应的12个氨基酸突变。第162位氨基酸是S蛋白表面的糖基化位点,与S1表位的屏蔽和宿主免疫监测的逃避有关[27]。Lednicky等研究显示,一个在NSP15与S1发生氨基酸点突变的PDCoV毒株引起3例临床案例[16],提示PDCoV可能对人类的致病性。因此,S基因的突变可能也是导致PDCoV扩大宿主范围产生跨物种传播的重要原因之一。

APN广泛存在于各种组织和细胞中,尤其在小肠绒毛上皮细胞中高效表达,且已被证明是人冠状病毒229E、犬冠状病毒、猫传染性腹膜炎病毒和TGEV的特异性受体[2829],而它是否是PEDV和PDCoV的受体仍存在争议[3031]。Wang等证实,与LLC-PK1和ST细胞中pAPN的内源性表达不同,Vero和BHK-21细胞缺乏APN表达[32],但本研究显示,PDCoV也可感染Vero细胞,且在P9仍可检测到病毒,因此提示存在PDCoV的某种未知受体。同时,本研究比较了不同种属源的APN序列,结果显示,本研究中涉及的仓鼠、鸡、鸭、猴、人与猪源APN氨基酸序列同源性分别为53.26%、64.02%、65.70%、78.45%和78.64%,说明其间差异较大,但PDCoV可同时感染这些细胞,提示确实存在APN之外的某种受体。Li等发现,APN在猪、猫、人和鸡中的表达可以显著增强PDCoV对非易感HeLa细胞的感染,且在APN敲除后PDCoV感染未被完全阻断[13],表明该病毒具有APN非依赖性进入途径,可能具有某种共同受体。总的来说,鸡胚、雏鸡、火鸡和小牛对PDCoV易感,再次提示病毒跨物种传播的潜在风险[1315, 33]。2021年Lednicky等在369名急性无名高热的儿童血样中检测出了PDCoV,首次报道PDCoV感染人类[16]。本研究也证实,PDCoV可以感染人类来源的HEK-293和HeLa细胞,在P1有轻微的增殖,但在体外不能完全适应,表明PDCoV有跨物种屏障感染人类的风险。在人类历史上,冠状病毒跨种传播造成了动物或人类疫情,因此,关注猪源冠状病毒PDCoV的跨种传播潜力,在防控猪病发生和公共卫生安全方面具有重要意义。

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