
中国科学院微生物研究所,中国微生物学会
文章信息
- 施静茹, 张立奎. 2023
- SHI Jingru, ZHANG Likui.
- 古菌RecJ蛋白的研究进展
- Research progress of archaeal RecJ protein
- 微生物学报, 63(4): 1318-1328
- Acta Microbiologica Sinica, 63(4): 1318-1328
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文章历史
- 收稿日期:2022-08-11
- 网络出版日期:2022-10-19
RecJ蛋白核酸酶属于aspartate-histidine-histidine (DHH)磷酸酯酶超家族,具有保守的DHH结构域,位于蛋白的N末端[1]。根据它们生化功能和保守结构域的不同,DHH磷酸酯酶分为4个家族:家族Ⅰ包含原核生物的RecJ核酸酶和真核生物的cell division cycle 45 (Cdc45)蛋白[1-3];家族Ⅱ由不同的nanoRNases组成,能够专一性地降解短小ssRNA分子[4];家族Ⅲ包括真核生物的Prune和PPX以及原核生物的无机焦磷酸酶[5-6],能够降解核苷酸的衍生物;家族Ⅳ是仅为古菌所有的Hef associated nuclease (HAN)核酸酶[7]。
对于细菌RecJ核酸酶,目前研究较多的是Deinococcus radiodurans和Thermus thermophilus RecJ核酸酶[8-15],人们对其生化功能、催化机制和结构特征的认识较为清楚。细菌RecJ具有5′→3′ ssDNA外切酶活性,但不具有切割双链DNA的活性[15-16]。最新的研究发现,细菌RecJ还具有核酸内切酶活性[17-18]。真核生物基因组不编码细菌RecJ蛋白,但是真核生物Cdc45蛋白与细菌RecJ具有同源性[3]。真核生物Cdc45蛋白缺少细菌RecJ中DHH催化结构域中的关键氨基酸残基,表明该蛋白不是一个核酸酶[19]。
根据生化功能的不同,古菌RecJ蛋白分为4类:第1类,具有细菌RecJ核酸酶活性的古菌RecJ蛋白;第2类,不具有细菌RecJ核酸酶活性的古菌RecJ蛋白;第3类,参与形成古菌CMG复合物的古菌RecJ蛋白;第4类,功能未知的古菌RecJ蛋白[2]。目前,几乎所有基因组已测序的古菌至少编码1个或多个RecJ蛋白。古菌RecJ蛋白具有细菌RecJ的核酸酶活性并且它们的核酸酶活性比细菌RecJ更加多样化。另外,古菌RecJ蛋白与真核生物Cdc45蛋白具有同源性和功能相似性。此外,古菌RecJ蛋白还具有独特的生化功能。因此古菌RecJ蛋白是古菌DNA复制、修复和重组过程中的重要成分。本文综述了古菌RecJ蛋白的研究进展,并对今后的研究进行了展望。
1 RecJ蛋白的生物学功能RecJ蛋白是一种多功能的蛋白,现已证实其参与DNA修复和DNA复制(图 1)。Lovett等最早对Escherichia coli K-12的recJ基因进行了遗传分析[20]。后来发现,E. coli RecJ参与UV引起的损伤修复和DNA重组[21-22]。进一步的研究表明,RecJ、exonuclease Ⅹ (ExoX)、exonuclease Ⅰ (Exo Ⅰ)和exonuclease Ⅶ (Exo Ⅶ)参与E. coli细胞内甲基化介导的错配修复[23-24]。
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图 1 RecJ蛋白的功能 Figure 1 Function of RecJ protein. |
双链断裂的5ʹ端切割,是重组DNA修复的必需步骤。E. coli RecF介导的重组是修复双链断裂损伤的途径之一[25]。研究发现,3′→5′解旋酶RecQ、5′→3′外切酶RecJ和单链DNA结合(single-strand DNA binding, SSB)蛋白相互协调参与RecF重组[26]。同样,细菌Neisseria gonorrhoeae RecJ也被证实参与同源重组和DNA修复途径[27]。
细菌RecJ具有脱氧核糖磷酸化酶(deoxyribose phosphatase, dRPase)活性[28],能够去除无嘌呤/无嘧啶(apurinic/apyrimidinic, AP)核酸内切酶切割AP位点所形成的脱氧核糖磷酸,暗示着该酶参与碱基切除修复。研究发现,敲除recJ基因的D. radiodurans菌株表现出对H2O2和methyl-methanesulphonate (MMS)极强的敏感性,同时该突变株细胞内具有更高的自发突变频率和未被修复的AP位点含量[13],从而证实了D. radiodurans RecJ在体内参与碱基切除修复。
研究发现,真核生物Cdc45蛋白能够与解旋酶minichromosome maintenance (MCM)和Go-Ichi-Ni-San (GINS)形成Cdc45-MCM-GINS (CMG)复合物[29-30],参与DNA复制。现已证实古菌RecJ蛋白能够与GINS和MCM形成功能类似真核生物CMG的复合物[31-35]。除此之外,古菌RecJ蛋白还能够与helicase-associated endonuclease for fork-structured DNA (Hef)蛋白相互作用,启动被阻止复制叉的修复[36-38]。
2 RecJ蛋白的结构特征目前,晶体结构得到解析的细菌RecJ蛋白主要源自于D. radiodurans[8-9]和T. thermophilus[10-11]。这些细菌RecJ蛋白晶体结构的解析,为揭示其催化机制提供了重要的线索。
D. radiodurans RecJ蛋白的晶体结构显示,其催化中心由N端的催化核心DHH和DHHA1结构域、C端的寡核苷酸/寡糖折叠结构域(oligonucleotide/oligosaccharide-binding, OB)组成(图 2A)[8]。生化研究发现,OB折叠结构域具有结合单链和双链DNA的活性,并能够增强RecJ核酸酶结合单链DNA能力[8]。另外,D. radiodurans RecJ蛋白与含有dRP类似物5′-P-dSpacer基团的ssDNA形成复合物的晶体结构显示该酶存在5′-单磷酸结合口袋,并且5′-dRP占据该酶的活性中心,从而暗示着该酶具有5′-dRP活性[9]。此外,D. radiodurans RecJ蛋白与dTMP、ssDNA和SSB C-末端形成复合物的结构也得到了解析,进一步从结构角度揭示了该酶切割ssDNA的机理[9]。同样,细菌T. thermophilus RecJ-Mn2+复合物的结构显示,RecJ蛋白利用双金属离子机理催化水解反应[10]。
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图 2 细菌RecJ核酸酶(A)、真核生物Cdc45蛋白(B)和古菌RecJ蛋白(C)的结构比较[2] Figure 2 Comparison of structures of bacterial RecJ nuclease (A), eukaryotic Cdc45 protein (B) and archaeal RecJ protein (C). Dra-RecJ: Deinococcus radiodurans Rec J (PDB: 5F55); Tko-GAN: Thermococcus kodakarensis GAN (PDB: 5GHT); Hum-Cdc45: Human Cdc45 (PDB: 5DGO); CTD: C-terminal domain. This figure is modified from this reference [2]. |
真核生物Cdc45蛋白的晶体结构也得到了解析,包括人类和痢疾变形虫的Cdc45蛋白[19, 39]。从整体结构上看,人类Cdc45蛋白类似细菌RecJ蛋白,由DHH和DHHA1结构域和连接区域组成(图 2B)。与细菌RecJ蛋白结构不同,真核生物Cdc45蛋白缺少DHH催化结构域中关键的氨基酸残基。重要的是,真核生物Cdc45蛋白具有CMG-interacting domain (CID)结构域,而不存在细菌RecJ蛋白的OB结构域。而古菌RecJ蛋白的整体空间结构均类似于细菌RecJ蛋白和真核生物Cdc45蛋白(图 2C),既具有细菌RecJ蛋白的DHH催化结构域,又具有真核生物Cdc45蛋白的CID结构域,表明古菌RecJ蛋白既具有核酸酶活性,又能够形成CMG复合物。因此,古菌RecJ蛋白具有独特的结构特征。
3 古菌RecJ蛋白目前,已被研究过的古菌RecJ蛋白主要来自广古菌,少数来自泉古菌(仅限于硫化叶菌属的Cdc45蛋白)。广古菌RecJ蛋白具有3个保守的结构域,而泉古菌RecJ蛋白缺少具有催化活性的DHH结构域(图 2)。表 1比较了不同古菌RecJ蛋白的生化功能,表明古菌编码不同数量的RecJ蛋白,且具有功能多样性。
Protein name | Component of CMG complex | Exonuclease activity | References | ||||
ssRNA | ssDNA | ||||||
5′→3′ | 3′→5′ | 5′→3′ | 3′→5′ | ||||
Tko-GAN | + | ‒ | ‒ | + | ‒ | [32] | |
Pfu-RecJ | + | ‒ | + | + | ‒ | [38] | |
Afu-RecJ | ‒ | ‒ | + | ‒ | + | [40] | |
Mja-RecJ1 | ‒ | + | ‒ | + | ‒ | [41] | |
Mja-RecJ2 | ‒ | ‒ | + | ‒ | + | [41] | |
Tac-RecJ1 | ‒ | ‒ | ‒ | + | ‒ | [33] | |
Tac-RecJ2 | + | ‒ | + | ‒ | + | [33] | |
Tga-RecJ | N.D. | ‒ | ‒ | + | ‒ | [42] | |
Sso-Cdc45 | + | ‒ | ‒ | ‒ | ‒ | [34] | |
Sac-Cdc45 | + | ‒ | ‒ | ‒ | ‒ | [35] | |
Tga: Thermococcus gammatolerans; Tko: Thermococcus kodakarensis; Pfu: Pyrococcus furiosus; Sso: Sulfolobus solfataricus; Sac: Sulfolobus acidocaldarius; Afu: Archaeoglobus fulgidus; Tac: Thermoplasma acidophilum; Mja: Methanocaldococcus jannaschii. “+” indicates the presence of activity; “‒” indicates the absence of activity; N.D.: Not determined. |
3.1 Thermococcus kodakarensis RecJ蛋白
极端嗜热古菌T. kodakarensis基因组编码2种RecJ-like蛋白:TK1252和TK0155。TK1252蛋白称作是GINS associated nuclease (Tko-GAN)[43],是目前研究最详尽的古菌RecJ蛋白,其活性、结构和生理功能均得到了阐明[31-32, 44-46]。研究发现,Tko-GAN只具有5′→3′ ssDNA外切酶活性,类似于细菌RecJ,但是不能切割dsDNA或RNA。
遗传学分析表明,Tko-GAN对于T. kodakarensis细胞的生长和分裂是非必需的[45],不同于真核生物Cdc45蛋白是DNA复制和细胞周期所必需的。另外,Tko-GAN能够去除5′端由DNA聚合酶D的链取代活性所形成的侧翼结构,暗示着该蛋白参与冈崎片段的加工。最新的研究发现,Tko-GAN能够与DNA聚合酶D相互作用[46],从而支持这一推测。敲除实验表明,单独敲除FEN1和GAN对菌株的完整性和生长没有影响,但是同时敲除FEN1和GAN,细胞却无法生长[45],表明细胞内FEN1或GAN完全能够维持细胞的完整性。进一步的研究发现,Tko-GAN能够在同时缺失FEN1和RNase HII的条件下维持细胞的生长,证实了Tko-GAN参与冈崎片段的成熟。
T. kodakarensis编码的第2个RecJ蛋白是TK0155,称作为HAN,即与Hef作用的核酸酶[7]。Hef蛋白在修复被阻止的复制叉起着必要的作用,主要存在广古菌和一些Asgard古菌[47],而在泉古菌中尚未发现。生化实验表明,Tko-HAN具有3′→5′外切酶活性,能够切割ssDNA和RNA底物,不同于Tko-GAN[37]。另外,Tko-Hef促进Tko-HAN活性,而Tko-HAN抑制Tko-Hef核酸酶活性。遗传学的数据表明,Tko-HAN对细胞的完整性为非必需的,而Δgan-han基因突变株在85 ℃的最适生长条件下不能生长[37]。但是,通过插入编码核酸酶缺陷HAN的基因到这个突变株的基因组内,该突变株仍不能恢复正常的生长[37],表明缺失GAN的不稳定CMG复合物不能使DNA复制进行,进一步表明HAN对于修复被阻止的复制叉的重要性,并且其核酸酶活性是该蛋白在细胞内发挥其功能所必需的。
3.2 Thermococcus gammatolerans RecJ蛋白本实验室探讨了极端嗜热耐辐射古菌T. gammatolerans RecJ (Tga-RecJ)蛋白的生化功能和催化机理[42]。研究发现,Tga-RecJ在高温条件下具有5′→3′方向切割ssDNA,类似于Tko-GAN、Pfu-RecJ、Mja-RecJ1和Tac-RecJ1。与Pfu-RecJ、Afu-RecJ、Mja-RecJ2和Tac-RecJ2不同,Tga-RecJ缺少3′→5′外切ssRNA活性。该酶活性的最适温度为50−70 ℃,最适pH为pH 7.0−9.0,其活性依赖Mn2+。该酶是目前所有报道的RecJ蛋白中最为耐热的蛋白。另外,本实验室在50−70 ℃温度下测试Tga-RecJ切割DNA的反应速率,从而揭示了该酶切割DNA的激活自由能为(10.5±0.6) kcal/mol,这是RecJ蛋白切割ssDNA的激活能量的首次报道。突变分析结果表明,Tga-RecJ D36A、D83A、D105A、H106A、H107A和D166A突变体活性完全损失,表明氨基酸残基D36、D83、D105、H106、H107和D166是该酶切割DNA的关键位点。
3.3 Pyrococcus furiosus RecJ蛋白极端嗜热古菌P. furiosus编码两种RecJ蛋白:Q8U3Q7和Q8TZE0,其中Q8U3Q7的蛋白为Pfu-HAN,Q8TZE0的蛋白为Pfu-RecJ。目前Pfu-HAN尚未被研究。Pfu-RecJ具有完整的DHH核酸酶结构域,具有类似于Tko-GAN的5′→3′ ssDNA活性。与Tko-GAN不同的是,Pfu-RecJ还具有3′→5′ ssRNA活性,能够水解单链RNA和RNA/DNA中的RNA链[38]。进一步的研究发现,复制蛋白A和DNA结合蛋白能够促进Pfu-RecJ去除RNA/DNA中的RNA链,这暗示着Pfu-RecJ可能在体内校对RNA引物。另外,Pfu-RecJ在体外切割ssRNA的活性高于切割RNA/DNA杂合体的活性,暗示着该酶参与RNA降解。
Pfu-RecJ蛋白的晶体结构显示,其结构由DHH、DHHA1和CID组成,类似于Tko-GAN结构[48]。Pfu-RecJ和Tko-GAN结构的不同之处在于连接DHH和DHHA1结构域的定位不同。类似于Tko-GAN,Pfu-RecJ通过其DHH结构域结合Pfu-GINS中GINS51亚基的B-结构域与GINS相互作用,暗示着Pfu-RecJ能够形成CMG复合物。另外,Pfu-RecJ蛋白与2个CMPs形成复合物的晶体结构也得到了解析,其结构显示该酶存在由几个带有正电荷的氨基酸残基组成的通道,用于结合ssDNA底物或者释放单个核苷酸产物。缺失CID结构域,导致Pfu-RecJ增加5倍5′→3′ ssDNA外切酶活性的kcat/Km值和4倍3′→5′ ssRNA外切酶活性的kcat/Km值,表明CID结构域调控该酶的活性。
3.4 Thermoplasma acidophilum RecJ蛋白嗜酸热古菌T. acidophylum基因组编码2个RecJ-like蛋白,分别命名为Tac-RecJ1和Tac-RecJ2,但是不编码HAN同源物。生化研究表明,Tac-RecJ1和Tac-RecJ2均是外切酶,但是它们具有不同的底物偏好性和不同的极性[33]。Tac-RecJ1具有5′→3′ ssDNA专一性外切酶活性,类似于Tko-GAN。然而,Tac-RecJ2具有3′→5′外切酶活性,能够切割ssRNA和ssDNA,并且RNA是该酶的最适底物。尽管Tac-RecJ1与Tko-GAN具有相似的底物偏好性和极性,但是它不能形成CMG复合物,而Tko-GAN却能形成CMG复合物。
Tac-RecJ2通过与Tac-Gins51的B结构域相互作用,与Tac-GINS按照2:1的摩尔比形成稳定的复合物[33]。进一步的研究发现,该复合物能够促进Tac-MCM活性,并且在细胞内证实了CMG复合物的存在。但是,Tac-RecJ2不能直接与Tac-MCM相互作用,在体外并不是激活解旋酶所必需。这些结果表明,尽管古菌和真核生物CMG复合物形成的保守性,古菌RecJ蛋白在DNA复制的功能仍不同于Cdc45。Tac-RecJ1作为细菌RecJ的类似物,在修复被阻止的复制叉过程发挥功能。另外,Tac-RecJ1能够降解冈崎片段。因此,T. acidophilum所编码的这2个RecJ蛋白在复制叉准确前进的不同过程中发挥功能。
3.5 Methanocaldococcus jannaschii RecJ蛋白嗜热产甲烷古菌M. jannaschii基因组编码3个RecJ-like蛋白,其中2个RecJ-like蛋白(MJ0977和MJ0831)为Tko-GAN同源物,另一个(MJ1198)为Tko-HAN同源物。尽管MJ1198蛋白的生化功能尚未研究,但是其N段的部分结构得到了解析(PDB: 2K52)。通过在E. coli中表达MJ0977或MJ0831蛋白,能够部分补偿recJ基因缺失的E. coli突变株对UV的敏感性[49],表明RecJ蛋白参与DNA修复,进一步表明RecJ蛋白在进化过程中的功能保守性。
MJ0977和MJ0831蛋白分别定义为Mja-RecJ1和Mja-RecJ2。研究发现,Mja-RecJ1更加类似于Tko-GAN和Tac-RecJ1,具有5′→3′核酸外切酶活性,能够切割ssDNA和ssRNA底物[41]。相对于ssRNA底物,该酶偏好ssDNA底物。与Mja-RecJ1不同,Mja-RecJ2具有3′→5′核酸外切酶活性,也能够切割ssDNA和ssRNA。相对于ssDNA,该酶更偏好ssRNA为底物。另外,5′端磷酸促进Mja-RecJ1活性,而3′端磷酸抑制Mja-RecJ2活性。与T. acidopylum不同,其编码的Tac-RecJ2能够与GINS相互作用,而M. jannaschii所编码的Mja-RecJ1和Mja-RecJ2均不能与Mja-GINS形成稳定的复合物。
3.6 Archaeoglobus fulgidus RecJ蛋白极端嗜热古菌A. fulgidus基因组编码3种RecJ蛋白:AF_0699、AF_0735和AF_0075。AF_0735蛋白在大肠杆菌中表达时,大部分形成包涵体,对纯化到极少量可溶性蛋白的活性分析表明,该蛋白不具有核酸酶活性。而AF_0075蛋白与其他两个RecJ蛋白相比,序列相似性较低,也不具有核酸酶活性。但是,AF_0699蛋白具有核酸酶活性[40]。研究发现,与Pfu-RecJ类似,A. fulgidus RecJ (Afu-RecJ, AF_0699)核酸酶不仅具有单链DNA特异性的3′→5′外切核酸酶活性,还具有单链RNA 3′→5′外切酶活性[40]。Afu-RecJ的活性需要二价金属离子,其中Mn2+是该酶的最适二价金属离子。该酶最适反应温度为55−65 ℃,其活性受高浓度NaCl (高于200 mmol/L)抑制。进一步的研究发现,Afu-RecJ对不同长度的单链DNA和单链RNA具有选择性,优先切割长度≥4个核苷酸长度的单链RNA和≥12个核苷酸长度的单链DNA。Afu-RecJ的生化功能特征暗示着该酶在细胞内参与DNA修复和RNA降解。
3.7 硫化叶菌RecJ-like蛋白上述描述的古菌RecJ蛋白来自广古菌,目前泉古菌的RecJ-like蛋白的报道,仅限于硫化叶菌属。Sulfolobus solfataricus Cdc45 (Sso-Cdc45)蛋白是第一个研究报道的泉古菌RecJ-like蛋白[34]。该蛋白最初被定义为RecJdbh,现在称为Sso-Cdc45蛋白。Sso-Cdc45蛋白与广古菌RecJ蛋白的相似性低,特别是缺少其他RecJ蛋白DHH催化结构域中的关键催化氨基酸残基(图 2)。因此,Sso-Cdc45蛋白不具有核酸酶活性,不是一个核酸酶。进一步的研究发现,Sso-Cdc45蛋白能够与GINS相互作用,并与MCM形成CMG复合物[35]。同样,硫化叶菌属中的S. acidocaldarius Cdc45 (Sac-Cdc45)蛋白得到了研究。利用Sac-Cdc45、Sac-GINS和Sac-MCM,体外构建Sac-CMG复合物,证实了Sac-Cdc45-GINS促进Sac-MCM活性的功能[35]。
3.8 Asgard古菌RecJ-like蛋白目前,已鉴定的Asgard古菌包括4种门类:Thorarchaeota、Odinarchaeota、Heimdallarchaeota和Lokiarchaeota[50]。序列分析表明[2],这4种门类的Asgard古菌均编码GAN-like蛋白,与Tko-GAN具有30%氨基酸序列相似性,包含了具有活性的RecJ-like结构域。但是只有Heimdallarchaeota门编码HAN-like同源物,暗示着Thorarchaeota、Odinarchaeota和Lokiarchaeota在进化过程中丢失了这一基因。
4 总结与展望古菌编码多个RecJ蛋白,具有核酸酶活性和不具有核酸酶活性的RecJ蛋白都已被发现,暗示着古菌RecJ蛋白在古菌DNA复制和修复以及维持基因组稳定性中发挥作用。古菌RecJ蛋白的结构与细菌RecJ蛋白的结构高度相似,并且具有真核生物Cdc45蛋白的特征。但是,古菌RecJ蛋白在底物偏好和作用方式上与细菌RecJ蛋白存在显著差异。另外,古菌RecJ蛋白与真核生物Cdc45蛋白相似,能够与MCM和GINS形成复合物,参与DNA复制。因此,古菌RecJ蛋白在古菌DNA复制和修复中扮演重要角色。
目前,利用生物化学、蛋白质晶体学和遗传学的方法对古菌RecJ蛋白的活性、结构特征和生理功能进行了探讨,从而使人们对古菌RecJ蛋白对不同底物偏好性和作用模式有了一定的认识。然而,古菌RecJ蛋白的功能尚未完全弄清楚,还有许多问题有待于回答:
(1) Tko-GAN和Tac-RecJ2既具有核酸酶活性,又是CMG的组分。作为CMG的组分,当解开DNA双螺旋后,它们是否在复制叉处发挥其核酸酶活性。如果是,它们作用于什么底物。如果这些蛋白质作为CMG的组分没有活性,它们的活性又如何被抑制。
(2) 古菌RecJ蛋白的核酸酶活性不是古菌CMG复合物功能所必需的,至少在硫化叶菌中不需要。因此,古菌细胞完全有可能存在含有抑制而非永久失活的RecJ蛋白的CMG。在这种情况下,古菌RecJ蛋白是否具有催化作用与结构作用,取决于它们在溶液中是游离的还是CMG的组分。如何区分古菌RecJ蛋白的催化作用和结构作用,需要进一步探讨。
(3) 生化数据表明,Pfu-RecJ具有校对3′端错配RNA引物的功能,遗传学分析结果暗示着Tko-GAN参与冈崎片段的加工。这样会引起一个问题:具有3′→5′ ssRNA外切活性的RecJ蛋白的活性中心与其5′→3′ ssDNA的活性中心是否一致。
(4) 古菌RecJ蛋白3′→5′ ssRNA外切活性与其作为CMG成分的功能是如何实现的。
(5) 目前,仍有一些古菌的遗传操作体系尚未建立,如何识别这些古菌RecJ蛋白(比如Tac-RecJ1)的生理功能。
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